ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Клинические проявления хронического атрофического гастрита: клинические рекомендации, обзор литературы и собственное наблюдение

Е.В. Лузина, Е.А. Томина, Е.Б. Жигжитова, Н.В. Ларева

ФДПО ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия Минздрава России»
Аннотация. Атрофический гастрит определяется как потеря желез желудка, с метаплазией или без нее, в условиях хронического воспаления, вызванное аутоиммунным путем или вследствие инфекции Helicobacter pylori. Желудочно-кишечные проявления заболевания неспецифичны. Разрушение париетальных клеток в желудке определяет уменьшение или прекращение секреции соляной кислоты. В условиях гипохлоргидрии нарушается всасывание микронутриентов, что ведет к формированию железо- и витамин В12-дефицитной анемии. Все пациенты с атрофическим гастритом должны быть обследованы на наличие инфекции Helicobacter pylori. В случае отрицательного результата необходима диагностика аутоиммунного гастрита. Независимо от этиологии, диагноз атрофического гастрита должен быть подтвержден морфологически с определением стадии процесса. Выраженная атрофия (стадия III/IV по системе OLGA) является фактором риска развития аденокарциномы желудка. Другим последствием атрофии при аутоиммунном гастрите является формирование нейроэндокринной опухоли. Возможные клинические исходы определяют необходимость длительного и регулярного эндоскопического и морфологического наблюдения. Аутоиммунный гастрит сочетается с другими аутоиммунными заболеваниями, среди которых наиболее распространены заболевания щитовидной железы. В статье представлено клиническое наблюдение тяжелого аутоиммунного атрофического гастрита у молодой женщины. Основными проявлениями заболевания оказались железо-, витамин В12-дефицитная анемия и диффузный токсический зоб с тиреотоксикозом, триггером формирования которого явилась перенесенная инфекция SARS-CoV-2. Клиническая ситуация освещена с точки зрения гематолога, эндокринолога и гастроэнтеролога.

Ключевые слова

аутоиммунный атрофический гастрит
Helicobacter pylori
анемия
диффузный токсический зоб

ВВЕДЕНИЕ

Хронические гастриты – группа хронических заболеваний, которые морфологически характеризуются воспалительными и дистрофическими процессами в слизистой оболочке желудка (СОЖ).

Согласно классификации хронических гастритов (Сидней, 1990/Хьюстон, 1994), выделяют основные три их типа: неатрофический, атрофический и особые формы [1]. Под атрофией СОЖ понимают утрату специализированных желудочных желез с замещением их метаплазированным эпителием или фиброзной тканью. Основными причинами формирования атрофии СОЖ выступают аутоиммунный процесс и инфекция Helicobacter pylori (НР) [1].

На атрофический гастрит, ассоциированный с НР, приходится 90% среди всех форм гастритов. Атрофия СОЖ является следствием повреждения зон пролиферации и/или деструкции желез посредством как прямого бактериального воздействия, так и воспалительного ответа организма хозяина. В ответ на внедрение НР происходит миграция нейтрофилов в зону внедрения, активация в них процесса перекисного окисления липидов (ПОЛ), увеличение продукции активных форм кислорода, провоспалительных цитокинов (фактора некроза опухоли-альфа, интерлейкинов 8 и 12), повреждение ДНК клеток и формирование кишечной метаплазии. Для данного типа гастрита характерны выраженная воспалительная реакция, более высокая степень кишечной метаплазии. Процесс затрагивает в основном антральный отдел и малую кривизну желудка [2, 3].

Аутоиммунный атрофический гастрит составляет 5% среди всех форм гастритов. Образующиеся при этом заболевании антитела приводят к атрофии железистого эпителия. Аутоиммунные реакции вызывают постепенное разрушение железистых эпителиоцитов с сохранением стволовых клеток. Фовеолярный эпителий при аутоиммунном атрофическом гастрите изменяется минимально, воспаление незначительное. Поражаются в основном тело и дно желудка с формированием гипо-, ахлоргидрии. Для этой формы гастрита типично образование антител к париетальным клеткам желудка и внутреннему фактору Кастла [4–7].

Возможно сочетание аутоиммунного и хеликобактерного гастрита. НР может индуцировать аутоиммунный процесс в желудке посредством механизмов молекулярной мимикрии и/или эпитопного распространения. Было обнаружено, что субъединица уреазы HР и субъединица желудочной АТФ-азы имеют гомологичное строение [8]. НР-ассоциированный аутоиммунный гастрит характеризуется метапластической атрофией тела желудка, нормальным или с умеренным воспалением антральным отделом, текущей или анамнестической инфекцией HР, а также наличием аутоантител [9].

Диагностика аутоиммунного гастрита (АИГ) представляет определенные трудности. Демонстрацией сочетания АИГ с гематологическими и эндокринными проявлениями может служить нижеприведенное клиническое наблюдение.

ОПИСАНИЕ КЛИНИЧЕСКОГО СЛУЧАЯ

Пациентка С., 38 лет, обратилась к терапевту с жалобами на выраженную общую слабость, головокружение, быструю чрезмерную утомляемость, сухость кожи, парестезии в нижних конечностях, ухудшение памяти. Эти симптомы беспокоили в течение месяца к моменту обращения.

Данные осмотра: нормостеническое тело­сложение, индекс массы тела (ИМТ) 23,4 кг/м2. Кожа бледная, склеры иктеричные. В легких дыхание везикулярное. Тоны сердца ритмичные, частота сердечных сокращений (ЧСС) 70/мин. Артериальное давление (АД) 120 на 80 мм рт.ст. Живот обычной формы, при пальпации мягкий, безболезненный. Печень по Курлову: 9 × 8 × 7 см, край эластичный, селезенка не пальпировалась.

Данные общего анализа крови: гемоглобин – 95 г/л; эритроциты – 3,2 × 1012/л; средний объем эритроцита (MCV) – 102,5 fl; среднее содержание гемоглобина в эритроците (MCH) – 34,6 pg; ретикулоциты – 1,2%; лейкоциты – 3,6 × 109/л; тромбоциты – 124 × 109/л. Лейкоцитарная формула: сегментоядерные нейтрофилы – 54%; лимфоциты – 32%; эозинофилы – 3%; моноциты – 11%. Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) – 28 мм/ч.

Данные биохимического анализа крови: билирубин общий – 32 мкмоль/л (норма – до 20,5 ед/л); прямая фракция – 8 мкмоль/л (норма – до 5,1 ед/л); креатинин – 72 мкмоль/л (норма – до 97,0 мкмоль,л); мочевина – 5,2 ммоль/л (норма – до 8,3 ммоль/л); аланинаминотрансфераза (АЛТ) – 32 Ед/л (норма – до 34 Ед/л), аспартатаминотрансфераза (АСТ) – 35 Ед/л (норма – до 40 Ед/л); лактатдегидрогеназа (ЛДГ) – 865 Ед/л (норма – до 250 Ед/л); общий белок – 72 г/л (норма – 65–85 г/л); сывороточное железо – 5,9 мкмоль/л (норма – 6,6–26 мкмоль,л); ферритин – 14 нг/мл (норма – 13–150 нг/мл); витамин В12 – 40 пг/мл (норма – 197–771 пг/мл).

Наличие у пациента макроцитарной гиперхромной анемии с легкой лейкопенией и тромбоцитопенией в сочетании с синдромом гемолиза, который проявлялся иктеричностью склер, повышением уровня ЛДГ, непрямого билирубина и существенным снижением концентрации витамина В12 и железодефицитом, дали основание диагностировать хроническую витамин В12 и железодефицитную анемию легкой степени тяжести. Была проведена терапия цианкобаламином и пероральными препаратами сульфата железа, после которой отмечалась положительная гематологическая динамика: в общем анализе крови гемоглобин повысился до 123 г/л, эритроциты – до 4,8 × 1012/л, ретикулоциты – до 2,5%, лейкоциты – до 4,6 × 109/л, тромбоциты – до 152 × 109/л. MCV составили 89,5 fl, MCH – 32,6 pg. Общий билирубин снизился до 18 мкмоль/л, ЛДГ – до 125 Ед/л.

Для установления причины дефицита витамина В12 пациентке было выполнено эндоскопическое исследование верхних отделов желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), по результатам которого сделано заключение о наличии атрофической гастропатии: пищевод свободно проходим, просвет не изменен, слизистая розового цвета, кардиальный жом на расстоянии 40 см от резцов, смыкается полностью, Z-линия четкая. Желудок обычных размеров и формы, натощак содержит небольшое количество желчи, слизь, пену. Перистальтика прослеживается во всех отделах. Складки извитые, продольные, эластичные, воздухом расправляются достаточно. Слизистая незначительно отечная, бледная, в антральном отделе пестрая. Привратник зияет, округлый. Луковица двенадцатиперстной кишки округлой формы. Слизистая оболочка розовая, бархатистая. Постбульбарный отдел не изменен. В просвете желчь.

При морфологическом исследовании гастробиоптатов из 5 стандартных точек желудка был выявлен хронический атрофический мультифокальный активный гастрит с выраженной кишечной метаплазией (более 60%), выраженной степенью активности воспалительного процесса в теле желудка, III стадии по системе OLGA.

Исследование антигена HР в кале дало отрицательный результат. В крови были обнаружены антитела к париетальным клеткам желудка IgG + IgА + IgM в титре 1:1280 (норма менее 1:40).

По прошествии 3 мес у пациентки появились раздражительность, нервозность, учащенное сердцебиение и дрожь в руках, которые она связала со стрессовой ситуацией. Однако было установлено, что месяц назад она перенесла COVID-19 в легкой форме.

При осмотре было обнаружено увеличение щитовидной железы до I степени (ВОЗ); ткань железы однородная, подвижная, безболезненная. Определялся мелко размашистый тремор кистей рук. Тоны сердца ясные, ритмичные, ЧСС в покое – 98/мин, АД – 120/80 мм рт.ст. Физикальных отклонений со стороны других органов и систем не обнаружено.

При исследовании тиреоидного статуса было выявлено снижение уровня тиреотропного гормона (ТТГ), повышение содержания свободных фракций трийодтиронина, тироксина и антител к тиреоидной пероксидазе (табл.).

64-1.jpg (65 KB)

При ультразвуковом исследовании были обнаружены увеличение объема щитовидной железы до 21 см3, диффузно-неоднородная структура и снижение эхогенности ткани железы.

Таким образом, у пациентки С. были выявлены манифестный тиреотоксикоз и синдром зоба. Для верификации диагноза были определены антитела к рецептору ТТГ, которые оказались повышенными до 3,2 МЕ/л (норма – до 1,75 МЕ/л); это позволило диагностировать диффузный токсический зоб I степени (ВОЗ), манифестный тиреотоксикоз.

Пациентке была проведена терапия тиамазолом (таблетки 10 мг 3 раза/сут) и бисопрололом (таблетки 5 мг 1 раз/сут), что привело к нормализации гормональных показателей и купированию клинической симптоматики.

ОБСУЖДЕНИЕ: КОММЕНТАРИЙ ГЕМАТОЛОГА

Согласно определению Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), анемией называют клинико-гематологический синдром, характеризующийся снижением уровня гемоглобина и в большинстве случаев гемоглобина и эритроцитов в единице объема. По критериям ВОЗ, анемия у мужчин диагностируется при уровне Hb ниже 130 г/л, у женщин — ниже 120 г/л, у беременных — ниже 110 г/л.

B12-дефицитная анемия является макроцитарной, к отличительным морфологическим признакам которой относятся гиперхромия эритроцитов и мегалобластный эритропоэз [10]. Учение о В12-дефицитной анемии берет свое начало в 1872 г., когда Biermer М.А. предложил термин «пернициозная» анемия, учитывая ее неизлечимость на тот момент. В 30-х гг. XX в. Castle W.В. начал лечить такую анемию, вводя в рацион больных говядину, обработанную желудочным соком. Это послужило основой для гипотезы о внутреннем и внешнем факторах, которые дают положительный клинический эффект. В 1948 г. витамин В12 был выделен в чистом виде, и на сегодня злокачественный характер витамин В12-дефицитной анемии является только историческим фактом [11].

В настоящее время отмечается рост заболеваемости витамин В12-дефицитной анемией. Эта патология характерна чаще всего для лиц пожилого возраста, но в ряде случаев диагностируется и у молодых [12]. Основным звеном патогенеза такой анемии выступает нарушение процессов синтеза РНК и ДНК в гемопоэтических клетках костного мозга, в которых участвует витамин В12.

Основную долю витамина В12 организм получает из продуктов животного происхождения: печени, мяса, яиц, рыбы, молока. Незначительное его количество синтезируется микрофлорой кишечника. В желудке В12 подвергается протеолизу и связывается с внутренним фактором, который представляет собой гликопротеин, синтезируемый париетальными клетками тела и дна желудка. В дистальном отделе подвздошной кишки комплекс витамин В12-гастромукопротеид всасывается при условиях нейтрального рН и в присутствии ионов кальция. Далее путь витамина В12 идет в портальный кровоток, где он связывается с белками плазмы, которая содержит его в виде трех коэнзимов: метилкобаламина, аденозилкобаламина и гидроксикобаламина. В процессах гемопоэза участвует метилкобаламин. Из него синтезируется тимидин, входящий в состав ДНК. В результате ряда реакций при дефиците витамина В12 происходит накопление метилмалоновой кислоты, которая в повышенных концентрациях обладает выраженным цитотоксическим, в частности нейротропным действием [13].

Причинами дефицита витамина В12 могут быть:

1. Длительное недостаточное поступление с пищей (у вегетарианцев) – через 2–4 года полного отсутствия в рационе пищи животного происхождения.

2. Заболевания ЖКТ (тотальная гастрэктомия, рак желудка, полипы желудка и кишечника, энтериты, резекция тонкой кишки, хронический алкоголизм, дивертикулы кишечника, глистная инвазия, врожденная недостаточность внутреннего фактора, аутоиммунные процессы в слизистой оболочке ЖКТ) [14].

Достаточно часто в сыворотке крови пациентов с В12-дефицитной анемией обнаруживаются различные антитела: к антигенам цитоплазмы париетальных клеток желудка, к внутреннему фактору и белкам-носителям. Наличие гематологических отклонений у пациентов с высоким титром антител к париетальным клеткам было исследовано в 2016 г. Е.А. Лосик с соавт. Наличие макроцитарной и гиперхромной анемии было выявлено только у 4 из 71 респондентов (5,6%), причем все они были старше 50 лет. У большинства пациентов единственным проявлением дефицита В12 было увеличение среднего объема эритроцитов [15].

Клинически В12-дефицитная анемия достаточно долго может протекать скрыто. Биохимически дефицит витамина В12 диагностируется при снижении его концентрации в сыворотке крови менее 140 пг/мл [10]. Латентный дефицит В12 выявляется значительно чаще, чем В12-дефицитная анемия [16].

Выделяют группы риска, которым целесо­образно проводить скрининг на доклинический дефицит витамина В12 по аналогии с латентным дефицитом железа: пожилые люди старше 75 лет, вегетарианцы, пациенты с резецированным желудком, кишечником, воспалительными заболеваниями кишечника, заболеваниями ЖКТ с синдромом мальабсорбции, принимающие метформин более 3 мес и ингибиторы протонной помпы более 12 мес [17].

Для В12-дефицитной анемии характерны типичные проявления анемического синдрома: слабость, утомляемость, головные боли, шум в ушах, головокружение, одышка при незначительной физической нагрузке, сонливость, сердцебиение, перебои в работе сердца. Кожа у таких пациентов чаще имеет желтушный оттенок за счет развивающегося в ряде случаев гемолиза. Глубокий дефицит витамина В12 приводит к ряду неврологических нарушений, что обусловлено поражением белого вещества задних и боковых рогов спинного мозга и дегенерацией периферических нервов. Синдром фуникулярного миелоза проявляется онемением кончиков пальцев, пощипыванием языка, нарушением координации походки, вплоть до развития атаксии. Нарушаются чувствительность, устойчивость в пробе Ромберга, развиваются гиперрефлексия, клонус стоп, эмоциональная неуравновешенность, агрессивность.

Гематологически витамин В12-дефицитная анемия проявляется снижением гемоглобина различной степени выраженности, гиперхромией и макроцитозом, повышением эритроцитарных индексов (MCV, MCH), анизоцитозом, пойкилоцитозом. Макроциты содержат остатки ядер (тельца Жолли, кольца Кебота), базофильную пунктацию (остатки рибосом). В результате дефицита В12 синтез ДНК нарушается не только в клетках эритроидного ряда, но и в лейкоцитах, тромбоцитах, что может сопровождаться лейко- и тромбоцитопенией. В костном мозге выявляется мегалобластический тип кроветворения [14].

Биохимически может выявляться синдром внутриклеточного гемолиза, который сопровождается желтушностью кожи, иктеричностью склер, повышением общего билирубина за счет непрямой фракции, лактатдегидрогеназы (ЛДГ) и снижением гаптоглобина, иногда увеличением селезенки.

Чаще всего диагностика дефицита витамина В12 не вызывает трудностей. Уже на момент сбора анамнеза и расшифровки общего анализа крови может быть выставлен правильный диагноз. После определения характера анемии необходимо провести диагностику ее причины. Для этого рекомендуется в первую очередь обследование ЖКТ.

Лечение анемии проводится согласно клиническим рекомендациям 2021 г. Всем пациентам с установленным диагнозом В12-дефицитной анемии вводится цианокобаламин в дозе 100–200 мкг/сут через день; в случае присоединения нарушений функции нервной системы – 400–500 мкг/сут в первую неделю ежедневно, далее с интервалами между введениями до 5–7 дней. В случае развития лекарственного аллергического дерматита прмиенение цианокобаламина сочетают с глюкокортикоидами. При повторных введениях препарата удается избежать развития нежелательных аллергических реакций путем уменьшения его дозы до 100–200 мг/сут, что не снижает эффективность терапии.

Дефицит В12 может сочетаться с латентным дефицитом железа. Активизация эритропоэза введением цианокобаламина может усугубить железодефицит. Поэтому диагностика состояния статуса железа обязательна для пациентов с дефицитом В12 с целью своевременной его коррекции.

Длительность терапии цианкоболамином определяется тяжестью В12-дефицитной анемии. После регресса анемии, лейкопении, тромбоцитопении и всех морфологических аномалий эритроцитов курс лечения продолжается еще 10–14 дней с целью создания «запасов» витамина В12 в печени.

Вследствие нарушения синтеза ДНК дистрофия проявляется практически во всех органах и системах, что усугубляет гипоксию при В12-дефицитной анемии, которая субъективно плохо переносится пациентами. Поэтому вопрос назначения заместительной терапии эритроцитсодержащими компонентами крови решается индивидуально. Пациенты пожилого и старческого возраста часто нуждаются в проведении гемокомпонентной терапии даже при умеренном снижении гемоглобина (до 75–85 г/л) [10].

ОБСУЖДЕНИЕ: КОММЕНТАРИЙ ЭНДОКРИНОЛОГА

Для верификации диагноза у пациентки с манифестным тиреотоксикозом и диффузным увеличением щитовидной железы были исследованы антитела к рецептору ТТГ, которые оказались повышенными. Эти антитела специфичны для диффузного токсического зоба (ДТЗ).

ДТЗ – это аутоиммунное заболевание, характеризующееся тиреотоксикозом и диффузным увеличением щитовидной железы. 80–85% случаев синдрома тиреотоксикоза во всем мире вызвано этим заболеванием. Чаще им страдают женщины молодого возраста. ДТЗ относится к мультифакторным заболеваниям: в его развитии имеют значение наследственность, инфекция, стресс, инсоляция и курение.

Патогенез ДТЗ в первую очередь связан с нарушением иммунорегуляции в сочетании с органической дисфункцией, являющейся следствием антигенспецифической атаки, дополняемой недостаточной супрессией и, следовательно, активацией лимфоцитов, действие которых направлено на антигены тироцитов. Другая сторона патогенеза ДТЗ – нарушение иммунорегуляции в сочетании с выработкой различных цитокинов (например, интерферона-γ), воздействующих на клетки-мишени с близкого расстояния [18, 19].

Запускать выработку аутоантител, которые вступают в перекрестную реакцию с аутоантигеном, после чего развивается иммунный ответ на соответствующие структуры клеток щитовидной железы, способен вирусный или микробный антиген, обладающий сходством с аутоантигеном по механизму молекулярной мимикрии. Аутоиммунные заболевания щитовидной железы, вероятно, провоцируются каким-то внешним фактором, например инфекцией, и этот фактор запускает экспрессию тироцитами HLA-DR, которая и приводит к развитию аутоиммунной патологии. Вместе с тем сторонники данной теории признают и дополнительную необходимость в нарушении функционирования иммунной системы. Вследствие цитокиновой стимуляции или комплементной атаки тиреоидные клетки могут продуцировать иммуноактивные молекулы (простагландин E2, интерлейкины 6 и 8), что дополнительно усиливает тироцитно-иммуноцитную сигнализацию [19, 20].

В качестве фактора, оказывающего повреждающее действие на щитовидную железу, могут выступать вирусы. Wei L. et al. (2003) пытались найти любое потенциально возможное повреждение собственно ткани щитовидной железы, вызванное SARS-CoV, в образцах, полученных при аутопсии 5 больных, в сравнении с 10 пациентами, умершими от других причин с неповрежденной щитовидной железой. Сверхэкспрессия некоторых неструктурированных белков SARS-CoV способна индуцировать апоптоз. Исследователи предположили, что именно непосредственное поражение железы приводит к снижению продукции тиреоидных гормонов. Было показано, что фолликулярный эпителий повреждался и слоями перемещался внутрь фолликула. Было выявлено множество подвергшихся апоптозу клеток, структура самого фолликула была деформирована: фолликулы становились расширенными или, наоборот, сплющенными, отсутствовали кальцитонин-позитивные клетки [19, 21].

В настоящее время вирусные поражения щитовидной железы рассматриваются чаще всего в контексте триггера подострого тиреоидита, «молчащего тиреоидита», иммуногенного тиреотоксикоза или гипотиреоза. Прямые доказательства присутствия вирусов в тканях щитовидной железы получены для ретровирусов и вируса паротита при подостром тиреоидите, ретровирусов (Т-лимфотропного вируса человека 1 типа, вируса пенистости человека, ВИЧ) при болезни Грейвса, энтеровирусов, вирусов краснухи, паротита, герпесвирусов и парвовирусов при аутоиммунном тиреоидите [22].

В исследование Lui D.T.W. et al. (2021) был включен 191 пациент с COVID-19 без предшествовавшей тиреоидной патологии (средний возраст 53,5±17,2 года, 51,8% мужчин). 84,3% участника перенесли COVID-19 легкой степени, 12,6% – средней и 3,1% – тяжелой степени. Исследователи пришли к выводу, что SARS-CoV-2 может оказывать прямое влияние на функцию щитовидной железы, так как около 15% пациентов с COVID-19 легкой и средней степени тяжести имели дисфункцию этого органа [23].

В другом зарубежном исследовании (Lania A. et al., 2020) приняли участие 287 пациентов (193 мужчин, средний возраст 66 лет, возрастной диапазон 27–92 года), госпитализированных с COVID-19 в обычные отделения. У них была проведена оценка функциональных тестов щитовидной железы и значений сывороточного интерлейкина 6. У 58 пациентов (20,2%) был обнаружен тиреотоксикоз (явный в 31 случае), у 15 (5,2%) диагностирован гипотиреоз (явный только в 2 случаях), 214 пациентов (74,6%) имели нормальную функцию щитовидной железы. В многомерном анализе тиреотоксикоз оказался значимо связанным с более высоким уровнем интерлейкина 6 (отношение шансов 3,25; 95% доверительный интервал: 1,97–5,36; p <0,001), его зависимость от возраста пациентов установлена не была (p=0,09) [24].

На сегодняшний день нет данных о непосредственном поражении щитовидной железы вирусом SARS-CoV-2, тем не менее результаты имеющихся исследований и клинических наблюдений указывают на потенциальное влияние коронавирусных инфекций, в частности SARS-CoV и SARS-CoV-2, на гипоталамо-гипофизарно-тиреоидную ось с развитием различной патологии или изменениями содержания тиреоидных гормонов [25].

В представленном клиническом наблюдении не исключается триггерная роль вируса SARS-CoV-2 в развитии ДТЗ у пациентки с имеющейся иммунной дисфункцией, проявлявшейся аутоиммунным гастритом и пернициозной анемией.

ОБСУЖДЕНИЕ: КОММЕНТАРИЙ ГАСТРОЭНТЕРОЛОГА

При иммунологическом исследовании пациентки были получены высокие титры антител IgG+A+M к париетальным клеткам желудка, которые составили 1:1280, и отрицательный результат тестирования на HP, что позволило диагностировать АИГ, III стадию (OLGA). Это заболевание встречается нечасто, в основном у женщин (3:1 относительно мужчин), и протекает бессимптомно. Иногда пациентов могут беспокоить проявления диспепсии, при этом в 60% случаев они соответствуют постпрандиальному дистресс-синдрому. Carabotti М. et al. исследовали зависимость симптомов АИГ от выраженности изменений в желудке и не обнаружили какой-либо связи между гистологической тяжестью повреждения СОЖ и наличием клинических признаков. Распределение легкой, умеренной и тяжелой атрофии тела желудка достоверно не отличалось между группами симптомных и бессимптомных больных. Дискинетические нарушения желудка были достоверно связаны с гипохлоргидрией [26].

Наиболее характерные клинические проявления АИГ – гематологические заболевания. У пациентов формируется железодефицитная анемия, которая связана с ахлоргидрией и нарушением всасывания негемового железа, или В12-дефицитная анемия, обусловленная отсутствием внутреннего фактора Кастла и связанного с этим нарушением всасывания цианокобаламина [27].

АИГ сочетается с другими аутоиммунными заболеваниями и наиболее часто с болезнями щитовидной железы. При АИГ в 3–8 раз чаще, чем в общей популяции, диагностируется аутоиммунный тиреоидит Хашимото. Нарушения фолликулярных клеток щитовидной железы и париетальных клеток желудка обусловлены многофакторной этиологией, возникающей в результате ассоциации между генетической восприимчивостью и рядом факторов окружающей среды. Специфический механизм, приводящий к повреждению тироцитов и/ или париетальных клеток, до сих пор плохо изучен, но этот сходный феномен частично объясняют общим эмбриологическим происхождением слизистых оболочек желудка и фолликулярных клеток щитовидной железы, развивающихся из эндодермы и имеющих некоторые функциональные и морфологические сходства [27].

Сахарный диабет 1-го типа – второе по частоте аутоиммунное заболевание, связанное с АИГ: у соответствующих пациентов он диагностируется в 2 раза чаще, чем в общей популяции. В более редких случаях встречаются витилиго, болезнь Аддисона, целиакия, ревматоидный артрит, псориаз, синдром Шегрена, миастения и другие аутоиммунные болезни [28].

К характерным иммунологическим показателям при АИГ относятся повышенные титры антител к париетальным клеткам желудка и внутреннему фактору Кастла.

Аутоиммунное повреждение клеток желудка, так же как и инфекция НР, вызывает атрофию слизистой оболочки, с выраженностью и распространенностью которой коррелирует риск развития рака желудка, что признано всеми международными сообществами. Хеликобактерный атрофический гастрит повышает риск некардиального рака желудка, а аутоиммунный – нейроэндокринных опухолей [29, 30]. В исследовании Terao Sh. et al. (2020) у больных с АИГ нейроэндокринные опухоли 1-го типа диагностировались в 11,4% случаев, аденокарциномы – в 9,8%, гиперпластические полипы – в 21,1% [31]. Развитие нейроэндокринных опухолей объясняется гиперплазией энтерохромафинных клеток на фоне гиперсекреции гастрина в ответ на ахлоргидрию у пациентов с АИГ. Опухоли 1-го типа встречаются наиболее часто среди всех нейроэндокринных опухолей (70–80%), носят мультицентрический характер с локализацией в области тела и дна желудка, имеют малый размер (менее 1–2 см). В 65% опухоли являются множественными, в 78% – полиповидными, в 5–10% случаев они метастазируют в лимфоузлы, в 2–5% – в печень [28].

Для диагностики атрофии СОЖ рекомендуется использовать неинвазивную методику определения уровня пепсиногенов в сыворотке крови. При НР-ассоциированном гастрите чаще регистрируются нормальный уровень пепсиногена I типа, разнонаправленные изменения пепсиногена II типа и снижение гастрина-17, тогда как для АИГ характерно значительное снижение пепсиногена I типа, нормальные цифры пепсиногена II типа и повышение гастрина-17 [32]. Согласно международным рекомендациям, низкие уровни пепсиногена-I в сыворотке и/или низкое соотношение пепсиногенов I и II типа позволяют выявить пациентов с продвинутыми стадиями атрофического гастрита, которым рекомендуется выполнение эндоскопии. При этом эндоскопическое исследование должно проводиться с взятием биопсийных образцов как минимум на двух топографических участках (по малой и большой кривизне, в антральном отделе и в теле желудка), также необходима дополнительная биопсия из угла желудка. Для выявления пациентов с гастритом на поздних стадиях могут использоваться системы гистологического определения стадии заболевания (системы OLGA и OLGIM). III и IV стадии указывают на более высокий риск развития рака желудка [33].

В целях канцеропревенции пациенты с атрофическим гастритом нуждаются в лечении и наблюдении. При НР-ассоциированном гастрите основной терапевтической стратегией служит эрадикационная терапия. Признано, что эрадикация НР лечит хронический неатрофический гастрит, может привести к регрессии атрофического гастрита и снижает риск рака желудка [33]. В исследовании Е.А. Лосик с соавт. показано, что проведение эрадикационной терапии НР у пациентов с антителами к париетальным клеткам желудка тормозит дальнейшее прогрессирование атрофических изменений слизистой оболочки тела желудка и способствует стабилизации уровня пепсиногена I [9].

Вместе с тем собственно лечение АИГ не разработано. В рамках терапии осуществляется коррекция железо- или В12-дефицитной анемии, возможно применение цитопротекторов. Было показано положительное влияние при АИГ ионов висмута, которые способны блокировать свободные кислородные радикалы, ослабляя повреждение клеток желудка [34]. В двух рандомизированных клинических исследованиях с участием 280 пациентов продемонстрировано уменьшение воспаления при применении ребамипида, в одном из них отмечено влияние препарата на кишечную метаплазию и дисплазию низкой степени [35, 36]. Согласно рекомендациям Российской гастроэнтерологической ассоциации (РГА) 2021 г., пациентам с хроническим гастритом, в том числе атрофическим, с целью потенцирования защитных свойств слизистой оболочки возможно рекомендовать терапию висмута трикалия дицитратом или ребамипидом в течение 4–8 нед (уровень убедительности рекомендаций – В, уровень достоверности доказательств – 2) [37].

Дальнейшее наблюдение за пациентами с атрофическим гастритом предусматривает использование высококачественной эндоскопии каждые 3 года при выраженных атрофических изменениях или кишечной метаплазии как в антральном отделе, так и в теле желудка (OLGA/OLGIM III/ IV стадии) и каждые 1–2 года при наличии семейного анамнеза рака желудка, а также при АИГ [33, 37, 38].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Хронический атрофический гастрит относится к заболеваниям, которые в значительной степени недооцениваются. Исходом его может стать формирование аденокарциномы желудка. В условиях хронического воспаления происходит потеря желез желудка, с метаплазией или без нее, в основном из-за инфекции НР или аутоиммунного процесса. Независимо от этиологии, диагноз атрофического гастрита должен быть подтвержден гистологически. Всех пациентов с атрофическим гастритом необходимо обследовать на наличие инфекции HР, и при ее выявлении проводить эрадикационную терапию.

Менее распространенной причиной атрофии слизистой оболочки выступает аутоиммунный процесс. Диагностика АИГ – довольно сложная задача ввиду отсутствия специфических желудочно-кишечных симптомов. Ахлоргидрия, разрушение париетальных клеток и внутреннего фактора Кастла приводят к дефициту железа и витамина В12, что и определяет клиническую картину АИГ. У таких пациентов часто имеются сопутствующие аутоиммунные расстройства, наиболее распространенными из которых являются аутоиммунные заболевания щитовидной железы; это также необходимо учитывать при диагностике и лечении. Важное клиническое последствие АИГ – формирование нейроэндокринных опухолей желудка, требующее регулярного эндоскопического и морфологического наблюдения.

Список литературы

1. Dixon M.F., Genta R.M., Yardley J.H., Correa P. Classification and grading of gastritis. The updated Sydney system. International. Workshop on the Histopathology of gastritis, Houston 1994. Am J Surg Pathol. 1996; 20(10): 1161–81.http://dx.doi.оrg/10.1097/00000478-199610000-00001.

2. Augusto A.C., Miguel F., Mendonça S. et al. Oxidative stress expression status associated to Helicobacter pylori virulence in gastric diseases. Clin Biochem. 2007; 40(9–10): 615–22. http://dx.doi.оrg/10.1016/j.clinbiochem.2007.03.014.

3. Farinati F., Cardin R., Cassaro M. et al. Helicobacter pylori, inflammation, oxidative damage and gastric cancer: A morphological, biological and molecular pathway. Eur J Cancer Prev. 2008; 17(3): 195–200. http://dx.doi.оrg/10.1097/CEJ.0b013e3282f0bff5.

4. Kato M., Uedo N., Toth E. et al. Differences in image-enhanced endoscopic findings between Helicobacter pylori-associated and autoimmune gastritis. Endosc Int Open. 2021; 9(1): E22–E30. http://dx.doi.оrg/10.1055/a-1287-9767.

5. Циммерман Я.С., Захарова Ю.А. Проблемные вопросы учения о хроническом гастрите. Клиническая медицина. 2017; 95(1): 8–14.

6. Rustgi Sh.D., Bijlani P., Shah Sh.C. Autoimmune gastritis, with or without pernicious anemia: Epidemiology, risk factors, and clinical management. Therap Adv Gastroenterol. 2021; 14: 17562848211038771. https://dx.doi.org/10.1177/17562848211038771.

7. Kulnigg-Dabsch S. Autoimmune gastritis. Wien Med Wochenschr. 2016; 166(13): 424–30.https://dx.doi.org/10.1007/s10354-016-0515-5.

8. Amedei A., Bergman M.P., Appelmelk B.J. et al. Molecular mimicry between Helicobacter pylori antigens and H+K+-adenotriphosphatase in human gastric autoimmunity. J Exp Med. 2003; 198(8): 1147–56. https://dx.doi.org/10.1084/jem.20030530.

9. Лосик Е.А., Селиванова Л.С., Антонова Т.В. с соавт. Морфологические критерии диагноза аутоиммунного гастрита. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2016; 26(5): 13–20.

10. Клинические рекомендации. Витамин В12 дефицитная анемия. Национальное гематологическое общество, Национальное общество детских гематологов, онкологов. Рубрикатор клинических рекомендаций Минздрава России. 2021. ID: 536. Доступ: https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/536_2 (дата обращения – 01.03.2023).

11. Хапалюк А.В. Витамин В12: биологическое значение, патогенетические механизмы и клинические проявления витаминной недостаточности. Лечебное дело. 2019; (4): 17–23.

12. Красновский А. Л., Григорьев С. П., Алнхина Р. М. с соавт. Современные возможности диагностики и лечения дефицита витамина В12. Клиницист. 2016; 10(3): 15–25.

13. Выдыборец С.В. Современное лицо витамин В12-дефицитной анемии. Что должен знать интернист? Гематология. Трансфузиология. Восточная Европа. 2019; 5(1): 86–95.

14. Гематология: Национальное руководство. Под ред. О.А. Рукавицына. М.: Гэотар-Медиа. 2015; 776 с.

15. Лосик Е.А., Ивашкин В.Т. Гематологические проявления аутоиммунного гастрита. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2016; 26(1): 37–43.

16. Левина А. А., Мещерякова Л. М., Цибульская М. М., Соколова Т. В. Дифференциальная диагностика анемий. Клиническая лабораторная диагностика. 2015; 60(12): 26–30.

17. Langan R. C., Goodbred A. J. Vitamin B12 deficiency: Recognition and management. Am Fam Physician. 2017; 96(6): 384–89.

18. Здор В.В., Маркелова Е.В., Гельцер Б.И. Новые участники нарушения толерантности к антигенам щитовидной железы: к концепции иммунопатогенеза аутоиммунных заболеваний щитовидной железы (обзор литературы). Медицинская иммунология. 2016; 18(3): 209–220.

19. Трошина Е.А., Мельниченко Г.А., Сенюшкина Е.С. с соавт. Адаптация гипоталамо-гипофизарно-тиреоидной и гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой систем к новому инфекционному заболеванию – Covid-19 в условиях развития Covid-19-пневмонии и/или цитокинового шторма. Клиническая и экспериментальная тиреоидология. 2020; 16(1): 21–27.

20. Dong Y.H, Fu D.G. Autoimmune thyroid disease: Mechanism, genetics and current knowledge. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2014; 18(23): 3611–18.

21. Wei L., Sun S., Xu C.H. et al. Pathology of the thyroid in severe acute respiratory syndrome. Hum Pathol. 2007; 38(1): 95–102.https://dx.doi.org/10.1016/j.humpath.2006.06.011.

22. Desailloud R., Hober D. Viruses and thyroiditis: An update. Virol J. 2009; (6): 5. https://dx.doi.org/10.1186/1743-422X-6-5.

23. Lui D.T.W., Lee C.H., Chow W.S. et al. Thyroid dysfunction in relation to immune profile, disease status, and outcome in 191 patients with COVID-19. J Clin Endocrinol Metab. 2021; 106(2): e926–e935. https://dx.doi.org/10.1210/clinem/dgaa813.

24. Lania A., Sandri M.T., Cellini M. et al. Thyrotoxicosis in patients with COVID-19: the THYRCOV study. Eur J Endocrinol. 2020; 183(4): 381–87. https://dx.doi.org/10.1530/EJE-20-0335.

25. Петунина Н.А., Мартиросян Н.С., Эль-Тарави Ясмин Ахмед Али с соавт. Заболевания щитовидной железы и Covid-19. Доктор.Ру. 2021; 20(2): 6–10.

26. Carabotti M., Lahner E., Esposito G. et al. Upper gastrointestinal symptoms in autoimmune gastritis. A cross-sectional study. Medicine (Baltimore). 2017; 96(1): e5784. https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000005784.

27. Conti L., Annibale B., Lahner E. Autoimmune gastritis and gastric microbiota. microorganisms. 2020; 8(11): 1827.https://dx.doi.org/10.3390/microorganisms8111827.

28. Мозговой С.И., Ливзан М.А., Кролевец Т.С., Шиманская А.Г. Нейроэндокринная опухоль как диагностический и прогностический критерий аутоиммунного гастрита. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2019; 29(6): 49–59.

29. Malfertheiner P., Megraud F., Rokkas Th. et al. Management of Helicobacter pylori infection: the Maastricht VI/Florence consensus report. Gut. 2022; gutjnl-2022-327745. https://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2022-327745. Online ahead of print.

30. Sugano K., Tack J., Kuipers E.J. et al. Kyoto global consensus report on Helicobacter pylori gastritis. Gut. 2015; 64(9): 1353–67.https://dx.doi.org/10.1136/gutjnl-2015-309252.

31. Terao Sh., Suzuki Sh., Yaita H. et al. Multicenter study of autoimmune gastritis in Japan: Clinical and endoscopic characteristics. Dig Endosc. 2020; 32(3): 364–72. https://dx.doi.org/10.1111/den.13500.

32. Coati I., Fassan M., Farinati F. et al. Autoimmune gastritis: Pathologist’s viewpoint. World J Gastroenterol. 2015; 21(42): 12179–89. https://dx.doi.org/10.3748/wjg.v21.i42.12179.

33. Pimentel-Nunes P., Libanio D., Marcos-Pinto R. et al. Management of epithelial precancerous conditions and lesions in the stomach (MAPS II): European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE), European Helicobacter and Microbiota Study Group (EHMSG), European Society of Pathology (ESP), and Sociedade Portuguesa de Endoscopia Digestiva (SPED) guideline update 2019. Endoscopy. 2019; 51(4): 365–88. https://dx.doi.org/10.1055/a-0859-1883.

34. Кононов А.В., Ливзан М.А., Мозговой С.И. Гастрит после эрадикации Helicobacter pylori – простые следы или серьезные последствия? Лечащий врач. 2011; (7): 7.

35. Han X, Jiang K, Wang B. et al. Effect of rebamipide on the premalignant progression of chronic gastritis: a randomized controlled study. Clin Drug Investig. 2015; 35(10): 665–73. https://dx.doi.org/10.1007/s40261-015-0329-z.

36. Kamada T., Sato M., Tokutomi T. et al. Rebamipide improves chronic inflammation in the lesser curvature of the corpus after Helicobacter pylori eradication: a multicenter study. Biomed Res Int. 2015; 2015: 865146. https://dx.doi.org/10.1155/2015/865146.

37. Ивашкин В.Т., Маев И.В., Лапина Т.Л. с соавт. Клинические рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации и ассоциации «Эндоскопическое общество РЭНДО» по диагностике и лечению гастрита, дуоденита. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2021; 31(4): 70–99.

38. Shah Sh.C., Piazuelo M.B., Kuipers E.J., Li D. AGA clinical practice update on the diagnosis and management of atrophic gastritis: Expert review. Gastroenterology. 2021; 161(4): 1325–32.e7. https://dx.doi.org/10.1053/j.gastro.2021.06.078.

Об авторах / Для корреспонденции

Елена Владимировна Лузина, к.м.н., доцент кафедры терапии ФДПО ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия Минздрава России», председатель Забайкальского научного общества гастроэнтерологов. Адрес: 672000, г. Чита, ул. Коханского, д. 5. E-mail: el.luz@list.ru.
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-8282-3056. eLibrary SPIN: 6748-9361
Елена Анатольевна Томина, к.м.н., доцент кафедры терапии ФДПО ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия Минздрава России». Адрес: 672000, г. Чита, ул. Коханского, д. 5.
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2423-666X
Евгения Батоевна Жигжитова, к.м.н., ассистент кафедры терапии ФДПО ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия Минздрава России». Адрес: 672000, г. Чита, ул. Коханского, д. 5.
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-5288-1298
Наталья Викторовна Ларева, д.м.н., профессор, проректор по научной и международной работе, зав. кафедрой терапии ФДПО ФГБОУ ВО «Читинская государственная медицинская академия Минздрава России», председатель Забайкальского регионального отделения РНМОТ. Адрес: 672000, г. Чита, ул. Коханского, д. 5.
ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9498-9216. eLibrary SPIN: 1228-6205

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.