ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Адреномедуллин: биологические функции и перспективы использования как биомаркера в клинической практике

А.А. Астаповский, В.Н. Дроздов, Е.В. Ших, Н.Б. Лазарева

ФГАУО ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Аннотация. В современной клинической практике имеется определенный дефицит объективных лабораторных показателей, которые позволяли бы определять этиологию заболевания или синдрома системного воспаления, служили бы точкой опоры при проведении мониторинга патологических процессов в организме и эффективности лечения, использовались бы как прогностические признаки исходов заболевания, например летальности. Новые лабораторные маркеры должны обладать высокой специфичностью и чувствительностью, коррелировать с тяжестью заболевания, что позволит проводить раннюю стратификацию пациентов в зависимости от предполагаемого исхода, чтобы обеспечить таким пациентам необходимую помощь в полном объеме. Одним из таких биомаркеров может стать открытый в 1993 г. адреномедуллин, который определяется в различных тканях и органах и выполняет множество биологических функций. В ряде исследований отмечено, что его уровень достоверно коррелирует с тяжестью заболевания при различной патологии. В статье представлены общие сведения об адреномедуллине, его функциях в организме, а также приведены данные, подтверждающие его прогностическую способность при различных патологических состояниях.

Ключевые слова

адреномедуллин
проадреномедуллин
биомаркеры
сепсис
COVID-19

ВВЕДЕНИЕ

Адреномедуллин представляет собой многофункциональный пептид, или гормокин, выделенный японскими учеными Kitamura K. et al. в 1993 г. из феохромоцитомы человека. Он состоит из 52 аминокислот и принадлежит к семейству вазоактивных пептидных гормонов, связанных с геном кальцитонина [1].

Термин «гормокин» означает способность оказывать действие, подобное цитокинам. Многочисленные исследования выявили широкое распространение адреномедуллина в различных органах и тканях, что подтверждает его важную роль во многих физиологических процессах. Наиболее он распространен в сердечно-сосудистой системе, мозговом веществе надпочечников, а также в легких, почках, печени, желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) и в центральной нервной системе (ЦНС) [2, 3]. Также адреномедуллин обнаружен во многих жидкостях организма, включая кровь, ликвор, мочу, грудное молоко, амниотическую жидкость [4].

Адреномедуллин синтезируется и секретируется в основном эндотелиальными и гладкомышечными клетками сосудистой стенки, которые также экспрессируют рецепторы для него [5]. Процесс синтеза адреномедуллина, как и любого другого белка, осуществляется с помощью трансляции. Изначально в результате работы гена ADM образуется препроадреномедуллин – предшественник адреномедуллина, состоящий из 185 аминокислот. После отщепления 21-го аминокислотного остатка N-конца препроадреномедуллин становится проадреномедуллином. Последующее расщепление проадреномедуллина приводит к образованию адреномедуллина. Ген, кодирующий синтез адреномедуллина, расположен на 11 хромосоме (11p11.1-3) и включает 4 экзона и 3 интрона [6, 7]. Синтезированный адреномедуллин имеет период жизни всего 22 мин, при этом уровень его в плазме не зависит от циркадных ритмов, возраста и пола. Расщепляется этот гормокин матриксной металлопротеиназой 2-го типа [8, 9]. На синтез и высвобождение адреномедуллина влияют такие биологически активные вещества, как цитокины (интерлейкин 1α, фактор некроза опухоли альфа и др.), эндотоксины, липополисахариды. [10]. Это позволяет предположить, что уровень адреномедуллина тесно связан с процессами воспаления, сепсисом и т.д.

Надежность и точность измерения уровня адреномедуллина в крови ограничена ввиду короткого периода его полураспада, а также из-за связывания со специфическим белком в плазме крови [11]. Решить эту проблему можно путем измерения среднефрагментного участка молекулы проадреномедуллина, так как он служит предшественником адреномедуллина. Данная молекула стабильнее, чем адреномедуллин, имеет более длинный период полувыведения, отщепляется от молекулы предшественника в соотношении 1:1 и не подвергается разрушению протеазами, так как предположительно является нефункциональным побочным продуктом [12].

МЕХАНИЗМЫ ПЕРЕДАЧИ СИГНАЛА И РЕЦЕПТОРЫ

Свои биологические функции адреномедуллин реализует через связывание и активацию рецепторов кальцитонина (CLR), а также через собственные рецепторы (АМ1, АМ2 и АМ3), которые образуются под действием специальных модифицирующих белков (белок-модифицирующий рецептор RAMP) [14]. В геноме человека были идентифицированы три изоформы модифицирующих белков (RAMP1, RAMP2, RAMP3). Они связываются с рецептором кальцитонина в эндоплазматическом ретикулуме и способствуют его транспорту к плазматической мембране [13]. В физиологических условиях наиболее распространенной изоформой является RAMP2. Однако экспрессия конкретной изоформы RAMP может изменяться при патологических условиях, определяя степень ответа на адреномедуллин и кальцитонин-ген-связанный пептид (CGRP). Как отмечают Gibbons С. et al., наиболее сильные изменения уровней экспрессии RAMP совпадают с ситуациями, в которых уровень адреномедуллина в плазме повышен, например, при сердечной недостаточности или сепсисе [14]. Специфические сайты связывания адреномедуллина расположены во многих клетках и тканях, таких как сердце, легкие, селезенка, печень, почечные клубочки и др. [14].

Адреномедуллин способен активировать самые разные пути передачи сигнала в зависимости от органа, ткани и типа клеток. Вместе с тем существует несколько основных сигнальных путей, посредством которых адреномедуллин проявляет свое действие: первый путь – через цАМФ, второй – через фосфоинозитид-3-киназу. Во многих типах клеток рецепторы адреномедуллина связаны с белками Gs, которые активируют аденилатциклазу и повышают внутриклеточные уровни цАМФ. Накопление цАМФ в гладкомышечных клетках сосудов вызывает активацию протеинкиназы А, которая, в свою очередь, увеличивает отток кальция (Ca2+), что приводит к расслаблению сосудов. Повышение внутриклеточного Ca2+ вызывает активацию синтазы оксида азота (NO) и высвобождение NO, что также влечет за собой расслабление сосудов. Активация NO адреномедуллином играет очень важную роль в регуляции сердечно-сосудистой системы, защищая клетки от ишемии реперфузионного повреждения и подавляя апоптоз эндотелиальных клеток [15, 16]. Второй путь передачи сигнала, активируемый адреномедуллином, – это фосфоинозитид-3-киназный путь (PI3K) в эндотелиальных клетках сосудов, где он регулирует несколько биологических процессов. Через этот путь адреномедуллин также действует на миоциты, усиливая неоваскуляризацию и обеспечивая им защитные и антиапоптические эффекты после ишемии [17].

ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ФУНКЦИИ В ОРГАНИЗМЕ ЧЕЛОВЕКА

Адреномедуллин обладает множеством различных эффектов в организме. Он проявляет сильное сосудорасширяющее действие, снижает как системное, так и периферическое сосудистое сопротивление (опосредованно, через усиление синтеза эндотелиальными клетками NO, повышение концентрации цАМФ и кальция, как было сказано выше) [18]. В результате этого повышается коллатеральный кровоток в ишемизированных тканях, что способствует уменьшению гипоксического повреждения. Например, при сепсисе в условиях снижения периферического кровотока вследствие вазоконстрикторных эффектов катехоламинов адреномедуллин обеспечивает компенсаторное восстановление тканевой перфузии. Установлено, что его уровень повышается у людей с артериальной гипертензией и коррелирует с ее степенью и тяжестью. Считается, что увеличение концентрации адреномедуллина обеспечивает компенсаторный механизм за счет сосудорасширяющего и диуретического эффекта [19, 20]. Адреномедуллин препятствует ремоделированию желудочков сердца, подавляя гипертрофию кардио­миоцитов и пролиферацию фибробластов, обладает противовоспалительной активностью, участвует в ангиогенезе сосудов [21]. Отмечалось, что содержание адреномедуллина возрастало по мере увеличения жесткости артериальной стенки, которая напрямую связана со степенью развития атеросклероза [22]. В свою очередь Kano H. et al. в своей работе отметили, что адреномедуллин обладает протективным действием в отношении сосудов при атеросклерозе, препятствуя апоптозу эндотелиальных клеток, а также вызывая регенерацию поврежденного эндотелия [23].

Адреномедуллин участвует в процессе ангиогенеза. Исследования Shindo T. et al. продемонстрировали важность адреномедуллина в этом процессе на мышиной модели. Ученые установили, что мутация, которая приводит к полному прекращению экспрессии гена адреномедуллина AM (-/-), приводит к внутриутробной гибели плода более чем в 80% случаев. При этом введение экзогенного адреномедуллина беременным самкам снизило уровень смертности эмбрионов до 21% [24].

Адреномедуллин играет ключевую роль в поддержании гомеостаза, способствует росту и развитию тканей сердечно-сосудистой системы, а также регулирует объем жидкости в организме путем непосредственного воздействия на гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковую ось. В исследованиях продемонстрировано, что адреномедуллин оказывает мочегонное и натрийуретическое действие за счет увеличения почечного кровотока и клубочковой фильтрации посредством вазодилатации [25]. Кроме диуретического, адреномедуллин проявляет антиоксидантный эффект путем уменьшения образования свободных радикалов кислорода в мезангиальных клетках, что обеспечивает иммунную и противовоспалительную защиту, подавляя повреждение клубочков [26]. В пользу этого свидетельствует тот факт, что у людей с хроническим гломерулонефритом отмечается повышенный уровень адреномедуллина [27].

Помимо влияния на гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковую ось, адреномедуллин регулирует секрецию гормонов во многих других тканях. Наиболее изученный на сегодняшний день его эффект – регуляция гликемии в крови через влияние на скорость секреции инсулина. Продемонстрировано, что адреномедуллин снижает секрецию инсулина, тогда как применение блокирующих моноклональных антител против адреномедуллина способствовало увеличению высвобождения этого гормона в 5 раз [28]. Также выявлено, что адреномедуллин оказывает бронходилатирующее действие: в частности, сообщалось, что его уровни в крови значительно возрастают при обострениях бронхиальной астмы [29, 30]. Интересно, что адреномедуллин вносит вклад в противовоспалительный процесс путем дозозависимого ингибирования цитокин-индуцированного высвобождения хемоаттрактанта нейтрофилов из альвеолярных макрофагов, индуцированных липополисахаридами [31].

Адреномедуллин оказывает действие и на ЦНС. В случае гипоксической ишемии и гипогликемии экспрессия гена адреномедуллина увеличивалась в нейронах центральной коры и периваскулярных глиальных клетках. Связно это с тем, что адреномедуллин увеличивает региональное и коллатеральное кровообращение, уменьшая тем самым ишемическое повреждение головного мозга [32, 33].

Для адреномедуллина характерно комплексное действие при воспалении. Он усиливает миграцию лейкоцитов в очаг воспаления, одновременно увеличивая кровоток в этой зоне; вместе с тем адреномедуллин уменьшает эндотелиальную проницаемость, тем самым угнетая образование экссудата [34]. Наряду с этим Walsh T.J. et al. показали, что адреномедуллин обладает антимикробной активностью и в зависимости от концентрации и времени воздействия способен значительно подавлять рост бактерий [35]. Последующие работы подтвердили эти данные и предоставили доказательства того, что грамположительные бактерии, выделенные с кожи и дыхательных путей, а также грамотрицательные бактерии из ЖКТ чувствительны к адреномедуллину [36]. Объясняется это тем, что адреномедуллин имеет много общего с другими катионными антимикробными пептидами. Например, химически он похож на человеческий b дефенсин 2, а также на 30% имеет гомологичное строение на генетическом уровне с группой цекропина [37]. Ультраструктурный анализ показал, что обработка адреномедуллином питательной среды, содержащей E. coli, вызывает разрушение клеточной стенки бактерии через 30 мин [38].

Учитывая вышеизложенное разнообразие выявленных биологических эффектов адреномедуллина, а также то, как широко он представлен в организме, стали проводиться исследования в попытке выяснить, меняется ли его уровень у пациентов при различных острых или хронических состояниях, и если да, то как можно использовать этот факт в клинической практике.

АДРЕНОМЕДУЛЛИН И СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТЫЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ

Было отмечено, что уровень адреномедуллина коррелирует с тяжестью состояния при таких заболеваниях, как инфаркт миокарда, легочная гипертензия, сердечно-сосудистая недостаточность. Многие исследователи отметили, что при данных патологиях уровень адреномедуллина в плазме нарастал [39, 40]. Например, в одно исследование было включено 15 пациентов (10 мужчин и 5 женщин), которые поступили в стационар через 6 ч после начала острого инфаркта миокарда (ОИМ). Критериями ОИМ служили боль за грудной клеткой более 30 мин, подъем сегмента ST более 2 мм, повышение креатинфосфокиназы более чем в 2 раза. Все пациенты находились в условиях блока реанимации и интенсивной терапии, получая соответствующее лечение в соответствии с протоколами и клиническими рекомендациями. Образцы крови для измерения уровня адреномедуллина брали через 12, 24, 48, 72 ч и через 1 и 3 нед после начала ОИМ. Уровень адреномедуллина в плазме измеряли с помощью радиоимунного анализа. Анализируя полученные результаты, исследователи пришли к выводу, что концентрация адреномедуллина была примерно в 5 раз выше в первые часы у пациентов с ОИМ, в сравнении с контрольными его значениями через 12 ч. В дальнейшем концентрация адреномедуллина снижалась, а через 3 нед возвращалась к исходному значению. Также было обнаружено, что концентрация адреномедуллина была выше у пациентов с сопутствующей хронической сердечной недостаточностью в анамнезе [40].

В другом исследовании оценивался уровень адреномедуллина в плазме крови у пациентов с сердечной недостаточностью разных функциональных классов (ФК) по классификации NYHA (New York Heart Association Functional Classification) [41]. Всего в исследование вошли 66 пациентов с сердечной недостаточностью в составе основной группы и 27 в составе контроля. Проанализировав результаты, исследователи заключили, что уровень адреномедуллина напрямую коррелировал с тяжестью сердечно-сосудистой недостаточности. Так, у пациентов с I ФК сердечной недостаточности по NYHA уровень адреномедуллина составлял 2,85±0,62 пмоль/л, тогда как у пациентов с IV ФК уровень возрастал до 8,74±3,42 пмоль/л (p <0,001). Полученные данные дают возможность использовать адреномедуллин как еще один биомаркер вместе с мозговым натрийуретическим пептидом для выявления пациентов с высокой вероятностью сердечно сосудистой недостаточности, а также для определения прогноза у таких пациентов.

Адреномедуллин можно использовать как предиктор будущих кардиоваскулярных осложнений у пациентов с высоким сердечно-сосудистым риском. Nishida H. et al. в своем исследовании сравнивали адреномедуллин с С-реактивным пептидом и адипонектином. Всего в исследовании участвовал 121 пациент с двумя и более факторами риска развития сердечно-сосудистых заболеваний (артериальной гипертензией, метаболическим синдромом, дислипидемией и т.д.). Для определения адреномедуллина в плазме применялся иммуноферментный анализ. Помимо адреномедуллина, оценивались также уровни С-реактивного белка (СРБ) и адипонеткина. Конечными точками были такие события, как инсульт различного генеза, острый коронарный синдром, застойная сердечная недостаточность (острая левожелудочковая недостаточность). Средний период наблюдения составил примерно 42 мес. В течение периода наблюдения 28 пациентов перенесли серьезные неблагоприятные события: у 6 пациентов был диагностирован инфаркт головного мозга, у 1 – геморрагический инсульт, у 11 – острый коронарный синдром, 1 пациент перенес ОИМ, 9 – острую левожелудочковую недостаточность. После анализа полученных результатов и их сравнения исследователи пришли к выводу, что уровень адреномедуллина изначально был значительно выше (14,6±6,3 пмоль/мл) у тех 28 человек, которые впоследствии перенесли неблагоприятные события, в отличие от 93 пациентов (11,6±3,3 пмоль/ мл), избежавших данных осложнений (p=0,033). Также было отмечено, что уровни СРБ и адипонектина существенно не различались в группах неблагоприятного исходя и без него. Исхода из вышеизложенного, исследователи предположили, что адреномедуллин можно использовать как предиктор развития будущих неблагоприятных сердечно-сосудистых осложнений у пациентов с высоким уровнем риска. Тем не менее дальнейшие исследования в этой области необходимо продолжить [42].

АДРЕНОМЕДУЛЛИН И ОСТРЫЕ НАРУШЕНИЯ МОЗГОВОГО КРОВООБРАЩЕНИЯ

Zhang H. et al. в своей работе оценили возможность использования адреномедуллина как предик­тора неблагоприятных исходов у пациентов после ишемического инсульта. Неблагоприятные исходы оценивались через 3 мес после инсульта и включали наступление смерти и увеличение количества баллов по шкале Рэнкина >2. В состав основной группы исследования вошли 138 пациентов, перенесших ишемический инсульт, в состав контрольной – 138 здоровых добровольцев. Было установлено, что у пациентов с ишемическим инсультом уровень адреномедуллина был выше, чем в контрольной группе: 79,9±27,3 против 36,8±10,4 пг/мл соответственно (p <0,001). Также было выявлено, что уровень исследуемого биомаркера достоверно коррелировал с показателем по шкале NIHSS (r=0,681; p <0,001). 66 (47,8%) пациентов в группе ишемического инсульта имели неблагоприятный исход через 3 мес (28 человек умерли, 40 имели более двух баллов по шкале Рэнкина). Авторы отметили, что у этих пациентов было больше баллов по шкале NIHSS и наблюдался более высокий уровень адреномедуллина, чем у других пациентов в группе ишемического инсульта. Многофакторный логистический регрессионный анализ показал, что оценка по NIHSS (отношение шансов (ОШ) 1,296; 95% доверительный интервал (ДИ): 1,105–1,702; p <0,001) и уровень адреномедуллина (ОШ 1,211; 95% ДИ: 1,101–1,582; p=0,004) выступали независимыми предикторами 3-месячной летальности. Анализ ROC-кривой показал, что концентрация адреномедуллина в плазме крови 86,3 пг/мл предсказывала 3-месячную летальность с площадью под кривой (AUC) 0,806 (95% ДИ: 0,730–0,868), с чувствительностью 82,1% и специфичностью 66,4% соответственно. Схожая ситуация сложилась и в плане прогнозирования неблагоприятных исходов. Многофакторный логистический регрессионный анализ продемонстрировал, что оценка по NIHSS (ОШ 1,247; 95% ДИ: 1,102–1,648; p <0,001) и уровень адреномедуллина в плазме (ОШ 1,193; 95% ДИ: 1,082–1,447; p=0,006) также являлись независимыми предикторами 3-месячного неблагоприятного неврологического осложнения у пациентов после ишемического инсульта. Анализ ROC-кривой свидетельствовал, что уровень адреномедуллина в плазме крови 85,3 пг/мл предсказывал развитие неблагоприятного неврологического осложнения с AUC 0,816 (95% ДИ: 0,742–0,877), с чувствительностью 69,7% и специфичностью 80,6% соответственно. Исходя из полученных данных, авторы исследования заключили, что сохраняющаяся высокая концентрация адреномедуллина у пациентов, перенесших ишемический инсульт, ассоциирована с развитием неблагоприятных неврологических осложнений и смерти в течение 3 мес [43].

В еще одно исследование, изучавшее возможность использования адреномедуллина в качестве прогностического маркера неблагоприятных состояний, были включены пациенты с внутримозговым кровоизлиянием. Здесь оценивались 3-месячная летальность, а также ранние и поздние неврологические осложнения. У пациентов, которые перенесли внутримозговое кровоизлияние, уровень адреномедуллина был достоверно выше, чем у контрольной группы: 96,7±38,1 против 35,5±11,2 пг/мл (p <0,001) соответственно. В течение первых 24 ч от развития кровоизлияния у 33 пациентов из 130 развились неврологические осложнения. Многофакторный анализ продемонстрировал, что показатель по шкале NIHSS (ОШ 1,334; 95% ДИ: 1,149–1,513; p <0,001) и уровень адреномедуллина в плазме (ОШ 1,267; 95% ДИ: 1,130–2,305; p <0,001) служили независимыми предикторами раннего неврологического ухудшения состояния пациентов. 3-месячная летальность составила 34,2% (39 пациентов). Как и в случае ранних неврологических осложнений, многофакторный анализ подтвердил, что показатель по NIHSS (ОШ 1,431; 95% ДИ: 1,180–1,564, p <0,001) и уровень адреномедуллина в плазме (ОШ 1,321; 95% ДИ: 1,125–2,771; p <0,001) также являются независимыми предикторами 3-месячной летальности. Согласно данным анализа ROC-кривой, адреномедуллин предсказывал 3-месячную летальность с AUC 0,860 (95% ДИ: 0,783–0,918; p=0,936).

Таким образом, адреномедуллин можно использовать как предиктор неблагоприятных исходов у пациентов не только с ишемическим инсультом, но и различными вариантами внутримозгового кровоизлияния [44].

АДРЕНОМЕДУЛЛИН И ЭНДОМЕТРИОЗ

Matson B. et al. обнаружили, что содержание адреномедуллина в гетеротопических очагах у женщин с эндометриозом значительно выше, чем в нормальном эндометрии. Кроме этого, исследователи продемонстрировали, что у женщин с эндометриозом концентрация адреномедуллина была выше и в плазме. Уровень адреномедуллина не зависел от фазы менструального цикла, а также не коррелировал с тяжестью эндометриоза. По мнению авторов, адреномедуллин может стать биомаркером эндометриоза, но в настоящий момент до конца не ясно, является ли повышение его уровня вторичным по отношению к эстрогенным и воспалительным свойствам эндометрия или же он выступает в роли возбуждающего патогенного фактора [45].

АДРЕНОМЕДУЛЛИН И ВНЕБОЛЬНИЧНАЯ ПНЕВМОНИЯ

В литературе опубликованы результаты ряда исследований, в которых оценивалась перспектива использования адреномедуллина для прогнозирования исходов у пациентов с бактериальными инфекциями различной степени тяжести. Espana P. et al. изучали, как соотносятся уровни проадреномедуллина с возможными исходами у пациентов с внебольничной пневмонией, которая диагностировалась по наличию основных жалоб и признаков заболевания – лихорадки, кашля, одышки, инфильтрата на рентгенограмме. Также в исследовании использовались специальные шкалы для оценки тяжести пневмонии – PSI, CURB-65, SCAP. Кровь для определения адреномедуллина брали в первые сутки после госпитализации. Конечной точкой служило развитие таких осложнений, как дыхательная недостаточность, острая почечная недостаточность, септический шок, перевод в отделение реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ). Также оценивалась 30-дневная летальность. Всего было отобран 491 пациент, из которых 256 находились на лечении в стационаре, а 235 лечились амбулаторно. 30-дневная летальность в исследовании составила 14,9% (n=33) в «госпитальной» группе и 1,7% (n=2) в «амбулаторной», причем уровень проадреномедуллина и других маркеров были значительно выше у пациентов, находившихся на стационарном лечении (p <0,0001). Также авторами отмечалось, что концентрация проадреномедуллина была существенно больше у пациентов с неблагоприятными исходами. Кроме того, проадреномедуллин имел значительно более высокую AUC (0,835; ДИ 95%: 0,798–0,871), чем СРБ (0,535; 95% ДИ: 0,500–0,590) и прокальцитонин (0,677; 95% ДИ 0,626–0,728) для прогнозирования исходов. Самую высокую точность прогнозирования дало сочетание баллов по шкале SCAP и уровня проадреномедуллина (AUC ROC=0,879; p <0,0001). Авторы пришли к заключению, что добавление анализа на проадреномедуллин к шкале SCAP может быть полезно для стратификации пациентов с внебольничной пневмонией по тяжести и клиническим исходам и, следовательно, способно помочь врачам в принятии решений о дальнейшей тактике лечения [46].

В другом наблюдательном проспективном исследовании изучалось, насколько изменяется кинетика проадреномедуллина у пациентов, находящихся в ОРИТ с тяжелой внебольничной пневмонией. Наблюдались 19 пациентов, у которых кровь для определения проадреномедуллина брали через 12 ч после введения первой дозы антибиотика; повторное взятие крови осуществляли через 48 ч. После обработки данных авторы заключили, что уровень проадреномедуллина плохо предсказывал летальность в ОРИТ (AUC 0,53; 95% ДИ: 0,26–0,79) и годичную летальность (AUC 0,51; 95% ДИ: 0,25–0,78) у больных с тяжелой пневмонией. Однако было установлено, что кинетика проадреномедуллина изменялась через 48 ч после терапии антибиотиками. Отсутствие снижения уровня проадреномедуллина через указанный промежуток времени значительно увеличивало шансы на наступление летального исхода независимо от общей тяжести заболевания по шкале SAPS (ОШ с поправкой на SAPSII 174; 95% ДИ: 2–15,422; р=0,024). Исходя из этого возникло предположение, что оценка уровня проадреномедуллина через 48 ч после начала применения антибиотиков может стать полезным инструментом для оценки эффективности или неэффективности проводимой терапии. Авторы считают, что необходимо и дальше проводить подобные исследования, поскольку в будущем практика определения уровня проадреномедуллина может привести к сокращению длительности антибиотикотерапии и, как следствие, к снижению экономических затрат и риска развития антибиотикорезистентности [47].

АДРЕНОМЕДУЛЛИН И СЕПСИС/СЕПТИЧЕСКИЙ ШОК

Адреномедуллин активно изучается как маркер для диагностики и мониторинга состояния пациентов с сепсисом и/или септическим шоком. Согласно новому консенсусному определению («Сепсис-3»), сепсис – это жизнеугрожающая острая органная дисфункция, возникающая в результате нарушения регуляции ответа макроорганизма на инфекцию, вызванную микроорганизмами различной этиологии [48]. В свою очередь, септический шок представляет собой подвид сепсиса: он характеризуется циркуляторной недостаточностью, которая проявляется артериальной гипотонией, требующей введения вазопрессоров, нарушением метаболизма в клетках и тканях организма с повышением уровня лактата более 2 ммоль/л, несмотря на адекватную инфузионную терапию [48]. Ранняя диагностика и своевременное лечение – наиболее важные факторы, влияющие на выживаемость пациентов с сепсисом. К сожалению, многие биомаркеры сесписа, применяемые в клинической практике, такие как СРБ, прокальцитонин, интерлейкин 6, обладают недостаточной специфичностью и чувствительностью, особенно у коморбидных пациентов [49]. В качестве дополнительного маркера ранней диагностики, а также для прогнозирования летальности и эффективности лечения у пациентов с сепсисом и/или септическим шоком может выступать адреномедуллин (или среднерегиональный проадреномедуллин).

Elke G. et al. выполнили рандомизированное контролируемое исследование пациентов с тяжелым сепсисом или септическим шоком в 33 отделениях интенсивной терапии Германии. Пациенты в соответствии с тяжестью заболевания были разделены на 3 группы (легкая, средняя, тяжелая). Всего было проанализировано 1089 пациентов, среди которых сепсис был у 41,2%, а септический шок – у 58,8%. Оценивалась 28-дневная летальность, которая составила 20% в группе сепсиса и 32,1% в группе септического шока. На основании полученных результатов авторы пришли к выводу, что проадреномедуллин имеет самую сильную связь с 28-дневной летальностью во всей популяции пациентов с сепсисом (отношение рисков (ОР) 2,46; 95% ДИ: 1,45–4,15) или септическим шоком (ОР 3,02; 95% ДИ: 2,48–3,69). Пациенты, у которых изначально уровень проадреномедуллина был высоким или же его уровень нарастал с течением времени, имели значительно более высокую вероятность летального исхода в течение 28 наблюдаемых дней. Кроме того, авторы сравнили прогностическую ценность адреномедуллина с другими маркерами, такими как прокальцитонин, СРБ, лактат крови, и обнаружили, что прогностическая ценность проадреномедуллина была выше, особенно в группах легкой и средней степени тяжести заболевания. В итоге был сделан вывод, что по изменению уровня проадреномедуллина можно оценивать эффективность проводимой терапии, что особенно актуально, когда концентрация прокальцитонина снижается, и это расценивается как успешно проводимое лечение. Авторы признали, что проадреномедуллин обеспечивает более точную стратификацию пациентов с сепсисом и/или септическим шоком по степени тяжести, а также лучше других маркеров и шкал оценивает риск летального исхода [50].

В еще одном наблюдательном многоцентровом исследовании авторы (Mebazaa A. et al.) измеряли уровень адреномедуллина у пациентов с сепсисом и/или септическим шоком для оценки обратимости органной недостаточности и определения риска 28-дневной летальности. Всего было задействовано 24 стационара и 583 пациента. Пациенты с уровнем адреномедуллина при поступлении 70 пг/ мл и выше имели более высокие риски смертности и необратимости органной недостаточности, чем больные, у которых уровень адреномедуллина был ниже 70 пг/мл или уменьшался с течением времени. Было выявлено, что пациенты, поступающие в состоянии септического шока, имеют значительно более высокую концентрацию адреномедуллина, чем пациенты, поступающие в состоянии сепсиса: 114,4 (62,6–214,5) против 57,5 пг/мл (31,2–101,5); р <0,0001. Авторы также указывают на то, что постоянно повышенный уровень адреномедуллина на второй день свидетельствовал о длительной органной недостаточности, а это, в свою очередь, приводило к увеличению 28-дневной летальности на 38% (ОР 4,9; 95% ДИ: 2,5–9,8) [51].

Andaluz-Ojeda D. et al. оценивали способность проадреномедуллина прогнозировать 28-дневную летальность у пациентов с сепсисом с разной степенью органной недостаточности. Наряду с этим авторы сравнили проадреномедуллин с другими маркерами – СРБ, прокальцитонином и лактатом. Это исследование представляло собой проспективную наблюдательную когорту пациентов, набранных последовательно из двух отделений интенсивной терапии в Испании и Франции. Всего в исследование были включены 326 пациентов, которые соответствовали критериям сепсиса согласно определению SEPSIS-3. У 21,7% из них был тяжелый сепсис, у 79,3% – септический шок. 28-дневная смертность составила 25,5% у пациентов с тяжелым сепсисом и 54,3% у больных с септическим шоком. Проведенный статистический анализ показал, что только уровни проадреномедуллина и лактата коррелировали с тяжестью и 28-дневной смертностью (ОШ 8,5; p <0,001). При этом проадреномедуллин показал лучшую AUC для прогнозирования 28-дневной летальности (0,79; 95% ДИ: 0,74–0,84; p <0,001). Когда же пациентов разделили на группы по степени органной недостаточности в соответствии со шкалой SOFA, проадреномедуллин оказался единственным биомаркером, который точнее всех прогнозировал риск наступления 28-дневной летальности: для групп SOFA ≤6, SOFA=7–12 и SOFA ≥13 значения AUC составили 0,75 (95% ДИ: 0,61–0,88), 0,74 (95% ДИ: 0,66–0,83) и 0,73 (95% ДИ: 0,59–0,86) соответственно (p <0,05). Добавление проадреномедуллина к шкале SOFA увеличило ее чувствительность и специфичность: AUROC=0,70 (95% ДИ: 0,58–0,82) и 0,77 (95% ДИ: 0,66–0,88) соответственно (p <0,05 для обоих). Таким образом, авторы данного исследования констатировали, что уровень проадреномедуллина коррелирует с тяжестью и летальностью у пациентов с сепсисом или септическим шоком. Кроме того, в отличие от других биомаркеров проадреномедуллин может предсказывать риск наступления летального исхода даже у пациентов с низкими баллами по шкале SOFA [52].

АДРЕНОМЕДУЛЛИН И ВИРУСНЫЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ

Некоторые исследования подтвердили прогностическую пользу проадреномедуллина при вирусных заболеваниях. Например, в небольшом проспективном исследовании оценивали его прогностическую ценность у пациентов с COVID-19. После обработки результатов авторы отметили, что AUC для прогнозирования 28-дневной летальности была самой высокой именно у проадреномедуллина – 0,905 (95% ДИ: 0,829–0,955; p <0,001), в то время как у СРБ этот показатель составил 0,769 (95% ДИ: 0,673–0,848; p <0,001), у Д-димера – 0,781 (95% ДИ: 0,686–0,858; p <0,001), а у прокальцитонина – 0,747 (95% ДИ: 0,650–0,829; p <0,001). Также проадреномедуллин совместно с другими маркерами воспаления был оценен как предиктор прогрессирования заболевания. В этом случае его AUC также была выше, чем у всех остальных маркеров, и составила 0,829 (95% ДИ: 0,740–0,897; p <0,001). Уровень проадреномедуллина выше 1,01 нмоль/л показал самую сильную независимую связь с 28-дневной летальностью (ОШ: 10,470; 95% ДИ: 2,066–53,049; p <0,005) и с прогрессированием заболевания (ОШ: 6,803; 95% ДИ: 1,458–31,750; p <0,015) [53].

В другом аналогичном исследовании также изучался уровень проадреномедуллина у пациентов с COVID-19. У умерших пациентов во время госпитализации его концентрация была достоверно выше, чем у выживших: медиана 2,59 нмоль/л, IQR 2,3–2,95 против медианы 0,82 нмолл/л и IQR 0,57–1,03 (p <0,0001). Согласно ROC-анализу, AUC проадреномедуллина для прогнозирования летальности равнялась 0,95 (95% ДИ: 0,86–0,99; p <0,0001). Уровень проадреномедуллина 1,73 нмоль/л был определен как оптимальное пороговое значение для прогнозирования летальности с чувствительностью 90% и специфичностью 95% [54].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Учитывая приведенные данные, можно сделать вывод, что адреномедуллин или его предшественник проадреномедуллин являются перспективными биомаркерами для использования в клинической практике при различных заболеваниях. Адреномедуллин может выступать в качестве независимого предиктора летальности у пациентов с бактериальными инфекциями различной локализации, а также при вирусных инфекциях, включая COVID-19. Добавление измерения этого маркера к существующим стандартным оценочным шкалам, таким как qSOFA APACHE II и NEWS, может значительно повысить чувствительность и специфичность последних.

Список литературы

1. Schonauer R., Els-Heindl S., Beck-Sickinger A. Adrenomedullin – new perspectives of a potent peptide hormone. J Pept Sci. 2017; 23(7–8): 472–85. https://dx.doi.org/10.1002/psc.2953.

2. Eto T., Kato J., Kitamura K. Regulation of production and secretion of adrenomedullin in the cardiovascular system. Regul Pept. 2003; 112(1–3): 61–69. https://dx.doi.org/10.1016/s0167-0115(03)00023-5.

3. Washimine H., Asada Y., Kitamura K. et al. Immunohistochemical identification of adrenomedullin in human, rat, and porcine tissue. Histochem Cell Biol. 1995; 103(4): 251–54. https://dx.doi.org/10.1007/bf01457408.

4. Ichiki Y., Kitamura K., Kangawa K. et al. Distribution and characterization of immunoreactive adrenomedullin in human tissue and plasma. FEBS Lett. 1994; 338(1): 6–10. https://dx.doi.org/10.1016/0014-5793(94)80106-1.

5. Eguchi S., Hirata Y., Kano H. et al. Specific receptors for adrenomedullin in cultured rat vascular smooth muscle cells. FEBS Lett. 1994; 340(3): 226–30. https://dx.doi.org/10.1016/0014-5793(94)80143-6.

6. Kitamura K., Sakata J., Kangawa K. et al. Cloning and characterization of cDNA encoding a precursor for human adrenomedullin. Biochem Biophys Res Commun. 1993; 194(2): 720–25. https://dx.doi.org/10.1006/bbrc.1993.1881.

7. Gumusel B., Chang J., Hyman A., Lippton H. Adrenotensin: An ADM gene product with the opposite effects of ADM. Life Sci. 1995; 57(8): PL87–PL90. https://dx.doi.org/10.1016/0024-3205(95)02012-8.

8. Wilkinson I., McEniery C., Bongaerts K. et al. Adrenomedullin (ADM) in the human forearm vascular bed: effect of neutral endopeptidase inhibition and comparison with proadrenomedullin NH2-terminal 20 peptide (PAMP). Br J Clin Pharmacol. 2001; 52(2): 159–64. https://dx.doi.org/10.1046/j.0306-5251.2001.1420.x.

9. Poyner D. International Union of Pharmacology. XXXII. The mammalian calcitonin gene-related peptides, adrenomedullin, amylin, and calcitonin receptors. Pharmacol Rev. 2002; 54(2): 233–46. https://dx.doi.org/10.1124/pr.54.2.233.

10. Kobayashi H., Minami S., Yamamoto R. et al. Adrenomedullin receptors in rat cerebral microvessels. Brain Res Mol Brain Res. 2000; 81(1–2): 1–6. https://dx.doi.org/10.1016/s0169-328x(00)00148-0.

11. Hirayama N., Kitamura K., Imamura T. et al. Secretion and clearance of the mature form of adrenomedullin in humans. Life Sci. 1999; 64(26): 2505–9. https://dx.doi.org/10.1016/s0024-3205(99)00208-8.

12. 1Morgenthaler N., Struck J., Alonso C., Bergmann A. Measurement of midregional proadrenomedullin in plasma with an immunoluminometric assay. Clin Chem. 2005; 51(10): 1823–29. https://dx.doi.org/10.1373/clinchem.2005.051110.

13. McLatchie L., Fraser N., Main M. et al. RAMPs regulate the transport and ligand specificity of the calcitonin-receptor-like receptor. Nature. 1998; 393(6683): 333–39. https://dx.doi.org/10.1038/30666.

14. Gibbons C., Dackor R., Dunworth W. et al. Receptor activity-modifying proteins: RAMPing up adrenomedullin signaling. Mol Endocrinol. 2007; 21(4): 783–96. https://dx.doi.org/10.1210/me.2006-0156.

15. Coppock H., Owji A., Bloom S., Smith D. A rat skeletal muscle cell line (L6) expresses specific adrenomedullin binding sites but activates adenylate cyclase via calcitonin gene-related peptide receptors. Biochem J. 1996; 318(Pt 1): 241–45. https://dx.doi.org/10.1042/bj3180241.

16. Shimekake Y., Nagata K., Ohta S. et al. Adrenomedullin stimulates two signal transduction pathways, cAMP accumulation and Ca2+ mobilization, in bovine aortic endothelial cells. J Biol Chem. 1995; 270(9): 4412–17. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.270.9.4412.

17. Okumura H., Nagaya N., Itoh T. et al. Adrenomedullin infusion attenuates myocardial ischemia/reperfusion injury through the phosphatidylinositol 3-kinase/Akt-dependent pathway. Circulation. 2004; 109(2): 242–48. https://dx.doi.org/10.1161/01.cir.0000109214.30211.7c.

18. Nakamura M., Yoshida H., Makita S. et al. Potent and long-lasting vasodilatory effects of adrenomedullin in humans. Circulation. 1997; 95(5): 1214–21. https://dx.doi.org/10.1161/01.cir.95.5.1214.

19. Ishimitsu T., Nishikimi T., Saito Y. et al. Plasma levels of adrenomedullin, a newly identified hypotensive peptide, in patients with hypertension and renal failure. J Clin Invest. 1994; 94(5): 2158–61. https://dx.doi.org/10.1172/jci117573.

20. Kato J., Kitamura K., Matsui E. et al. Plasma adrenomedullin and natriuretic peptides in patients with essential or malignant hypertension. Hypertens Res. 1999; 22(1): 61–65. https://dx.doi.org/10.1291/hypres.22.61.

21. Vincent J., Marshall J., Namendys-Silva S. et al. Assessment of the worldwide burden of critical illness: the Intensive Care Over Nations (ICON) audit. Lancet Respir Med. 2014; 2(5): 380–86. https://dx.doi.org/10.1016/s2213-2600(14)70061-x.

22. Kita T., Kitamura K., Hashida S. et al. Plasma adrenomedullin is closely correlated with pulse wave velocity in middle-aged and elderly patients. Hypertens Res. 2003; 26(11): 887–93. https://dx.doi.org/10.1291/hypres.26.887.

23. Kano H., Kohno M., Yasunari K. et al. Adrenomedullin as a novel antiproliferative factor of vascular smooth muscle cells. J Hypertens. 1996; 14(2): 209–13. https://dx.doi.org/10.1097/00004872-199602000-00009.

24. Shindo T., Kurihara Y., Nishimatsu H. et al. Vascular abnormalities and elevated blood pressure in mice lacking adrenomedullin gene. Circulation. 2001; 104(16): 1964–71. https://dx.doi.org/10.1161/hc4101.097111.

25. McGregor D., Troughton R., Frampton C. et al. Hypotensive and natriuretic actions of adrenomedullin in subjects with chronic renal impairment. Hypertension. 2001; 37(5): 1279–84. https://dx.doi.org/10.1161/01.hyp.37.5.1279.

26. Chini E., Chini C., Bolliger C. et al. Cytoprotective effects of adrenomedullin in glomerular cell injury: Central role of cAMP signaling pathway. Kidney Int. 1997; 52(4): 917–25. https://dx.doi.org/10.1038/ki.1997.413.

27. Kubo A., Kurioka H., Minamino N. et al. Plasma and urinary levels of adrenomedullin in chronic glomerulonephritis patients with proteinuria. Nephron. 1998; 80(2): 227–30. https://dx.doi.org/10.1159/000045172.

28. Zudaire E., Cuttitta F., Martı-nez A. Regulation of pancreatic physiology by adrenomedullin and its binding protein. Regul Pept. 2003; 112(1–3): 121–30. https://dx.doi.org/10.1016/s0167-0115(03)00030-2.

29. Yang B., Lippton H., Gumusel B. et al. Adrenomedullin dilates rat pulmonary artery rings during hypoxia: Role of nitric oxide and vasodilator prostaglandins. J Cardiovasc Pharmacol. 1996; 28(3): 458–62. https://dx.doi.org/10.1097/00005344-199609000-00016.

30. Kohno M., Hanehira T., Hirata K. et al. An accelerated increase of plasma adrenomedullin in acute asthma. Metabolism. 1996; 45(11): 1323–25. https://dx.doi.org/10.1016/s0026-0495(96)90109-2.

31. Kamoi H., Kanazawa H., Hirata K. et al. Adrenomedullin inhibits the secretion of cytokine-induced neutrophil chemoattractant, a member of the interleukin-8 family, from rat alveolar macrophages. Biochem Biophys Res Commun. 1995; 211(3): 1031–35. https://dx.doi.org/10.1006/bbrc.1995.1914.

32. Serrano J., Alonso D., Fernandez A. et al. Adrenomedullin in the central nervous system. Microsc Res Tech. 2002; 57(2): 76–90. https://dx.doi.org/10.1002/jemt.10053.

33. Dogan A., Suzuki Y., Koketsu N. et al. Intravenous infusion of adrenomedullin and increase in regional cerebral blood flow and prevention of ischemic brain injury after middle cerebral artery occlusion in rats. J Cereb Blood Flow Metab. 1997; 17(1): 19–25. https://dx.doi.org/10.1097/00004647-199701000-00004.

34. Hippenstiel S., Witzenrath M., Schmeck B. et al. Adrenomedullin reduces endothelial hyperpermeability. Circ Res. 2002; 91(7): 618–25. https://dx.doi.org/10.1161/01.res.0000036603.61868.f9.

35. Walsh T.J., Martinez A., Peter J. et al. Antimicrobial activity of adrenomedullin and its gene-related peptides. ClinInfect Dis. 1996; 23: 877.

36. Allaker R. An investigation into the antimicrobial effects of adrenomedullin on members of the skin, oral, respiratory tract and gut microflora. FEMS Immunol Med Microbiol. 1999; 23(4): 289–93. https://dx.doi.org/10.1016/s0928-8244(98)00148-5.

37. Lucyk S., Taha H., Yamamoto H. et al. NMR conformational analysis of proadrenomedullin N-terminal 20 peptide, a proangiogenic factor involved in tumor growth. Biopolymers. 2006; 81(4): 295–308. https://dx.doi.org/10.1002/bip.20418.

38. Allaker R., Grosvenor P., McAnerney D. et al. Mechanisms of adrenomedullin antimicrobial action. Peptides. 2006; 27(4): 661–66. https://dx.doi.org/10.1016/j.peptides.2005.09.003.

39. Kato J., Kobayashi K., Etoh T. et al. Plasma adrenomedullin concentration in patients with heart failure. J Clin Endocrinol Metab. 1996; 81(1): 180–83. https://dx.doi.org/10.1210/jcem.81.1.8550749.

40. Kobayashi K., Kitamura K., Hirayama N. et al. Increased plasma adrenomedullin in acute myocardial infarction. Am Heart J. 1996; 131(4): 676–80. https://dx.doi.org/10.1016/s0002-8703(96)90270-7.

41. Nishikimi T., Saito Y., Kitamura K. et al. Increased plasma levels of adrenomedullin in patients with heart failure. J Am Coll Cardiol. 1995; 26(6): 1424–31. https://dx.doi.org/10.1016/0735-1097(95)00338-x.

42. Nishida H., Horio T., Suzuki Y. et.al. Plasma adrenomedullin as an independent predictor of future cardiovascular events in high-risk patients: Comparison with C-reactive protein and adiponectin. Peptides. 2008; 29(4): 599–605. https://dx.doi.org/10.1016/j.peptides.2007.12.006.

43. Zhang H., Tang B., Yin C. et al. Plasma adrenomedullin levels are associated with long-term outcomes of acute ischemic stroke. Peptides. 2014; 52: 44–48. https://dx.doi.org/10.1016/j.peptides.2013.11.025.

44. Wang C., Lin H., Xu J. et al. Blood levels of adrenomedullin on admission predict outcomes after acute intracerebral hemorrhage. Peptides. 2014; 54: 27–32. https://dx.doi.org/10.1016/j.peptides.2014.01.005.

45. Matson B., Quinn K., Lessey B. et al. Elevated levels of adrenomedullin in eutopic endometrium and plasma from women with endometriosis. Fertil Steril. 2018; 109(6): 1072–78. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2018.02.004.

46. Espana P., Capelastegui A., Mar C. et al. Performance of pro-adrenomedullin for identifying adverse outcomes in community-acquired pneumonia. Journal of Infection. 2015; 70(5): 457–66. https://dx.doi.org/10.1016/j.jinf.2014.12.003.

47. Pereira J., Azevedo A., Basílio C. et al. Mid-regional proadrenomedullin: An early marker of response in critically ill patients with severe community-acquired pneumonia? Rev Port Pneumol (2006). 2016; 22(6): 308–14. https://dx.doi.org/10.1016/j.rppnen.2016.03.012.

48. Rudnov V., Kulabukov V. SEPSIS-3: Updated main definitions, potential problems and next practical steps. Messenger of Anesthesiology and Resuscitation. 2016; 13(4): 4–11. https://dx.doi.org/10.21292/2078-5658-2016-13-4-4-11.

49. Bloos F., Reinhart K. Rapid diagnosis of sepsis. Virulence. 2013; 5(1): 154–60. https://dx.doi.org/10.4161/viru.27393.

50. Elke G., Bloos F., Wilson D. et al. The use of mid-regional proadrenomedullin to identify disease severity and treatment response to sepsis – a secondary analysis of a large randomised controlled trial. Critical Care. 2018; 22(1): 79. https://dx.doi.org/10.1186/s13054-018-2001-5.

51. Mebazaa A., Geven C., Hollinger A. et al. Circulating adrenomedullin estimates survival and reversibility of organ failure in sepsis: the prospective observational multinational Adrenomedullin and Outcome in Sepsis and Septic Shock-1 (AdrenOSS-1) study. Critical Care. 2018; 22(1): 354. https://dx.doi.org/10.1186/s13054-018-2243-2

52. Andaluz-Ojeda D., Nguyen H., Meunier-Beillard N. et al. Superior accuracy of mid-regional proadrenomedullin for mortality prediction in sepsis with varying levels of illness severity. Ann Intensive Care. 2017; 7(1): 15. https://dx.doi.org/10.1186/s13613-017-0238-9.

53. Garcia de Guadiana-Romualdo L., Calvo Nieves M., Rodriguez Mulero M. et al. MR-proADM as marker of endotheliitis predicts COVID-19 severity. Eur J Clin Invest. 2021; 51(5): e13511. https://dx.doi.org/10.1111/eci.13511.

54. Lo Sasso B., Gambino C., Scichilone N. et al. Clinical utility of midregional proadrenomedullin in patients with COVID-19. Lab Med. 2021; 52(5): 493–98. https://dx.doi.org/10.1093/labmed/lmab032.

Об авторах / Для корреспонденции

Александр Алексеевич Астаповский, аспирант кафедры клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней ФГАУО ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет). Адрес: 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2.
E-mail: al.astapovskii@gmail.com. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-7430-3341
Владимир Николаевич Дроздов, д.м.н., профессор, профессор кафедры клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней ФГАУО ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет). Адрес: 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8,
стр. 2. E-mail: vndrozdov@yandex.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-7430-3341
Евгения Валерьевна Ших, д.м.н., профессор, зав. кафедрой клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней, директор Института профессионального образования ФГАУО ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет). Адрес: 119991,
г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2. E-mail: chih@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0001-6589-7654
Наталья Борисовна Лазарева, д.м.н., профессор кафедры клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней ФГАУО ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет). Адрес: 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2. E-mail: natalia.lazareva@gmail.com. ORCID: https://orcid.org/0000-0001-6528-1585

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.