ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Механизмы нейровоспаления и тромбовоспаления при цереброваскулярной патологии и сосудистых когнитивных нарушениях

И.А. Кольцов, И.А. Щукин, В.И. Чубыкин, М.С. Фидлер

1) ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России, г. Москва; 2) ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России г. Москва
Аннотация. В последние годы исследователи и клиницисты все большее внимание уделяют изучению концепции тромбовоспаления, т.е. дисрегуляции физиологического баланса тромбоза и воспаления с переходом организма к протромботическому и провоспалительному фенотипу. Особенно важной видится роль тромбовоспаления в развитии и прогрессировании церебровас­кулярных заболеваний. В случаях острого и хронического ишемического повреждения вещества головного мозга запускается ряд патофизиологических процессов, приводящих к гибели всех пулов церебральных клеток и необратимому повреждению проводящих путей, что клинически проявляется не только развитием очаговой неврологической симптоматики, но и когнитивными нарушениями. К таким тесно взаимосвязанным и взаимозависимым процессам относятся нейровоспаление, окислительный стресс, повреждение ГЭБ с разобщением метаболических связей между структурами нейрососудистой единицы, запуск прямого или опосредованного апоптоза. В представленном обзоре рассматриваются взаимосвязи процессов нейровоспаления и тромбоза в рамках концепции тромбовоспаления.

Ключевые слова

тромбовоспаление
цереброваскулярные болезни
гемостаз
нейровоспаление
когнитивные нарушения

ВВЕДЕНИЕ

Иммунотромбоз и тромбовоспаление – это концепции, описывающие тесную взаимозависимость воспаления и процессов активации системы гемостаза. Впервые в современном виде термин «иммунотромбоз» был предложен Engelmann B. и Massberg S. [1] для описания процесса вовлечения гемостаза в механизмы системы врожденного иммунитета, при котором в ответ на воспалительные изменения происходит контролируемое формирование микротромбозов с целью изоляции инфекционного агента. Под термином «тромбовоспаление» в настоящее время понимают дисрегуляцию физиологических процессов иммунотромбоза с системным переходом организма к протромботическому и провоспалительному фенотипу, что особенно важно при сосудистых заболеваниях, в том числе цереброваскулярной патологии [2].

Сосудистые когнитивные нарушения представляют собой гетерогенную группу церебральной патологии, имеющей множество различных причин. В соответствии с принятой в 2018 г. классификацией VICCCS [3], сосудистые когнитивные нарушения, включая сосудистую деменцию, можно разделить на 4 группы: постинсультная деменция, подкорковое ишемическое когнитивное снижение и деменция, мультиинфарктная деменция и смешанная деменция. В случае как острого, так и хронического ишемического повреждения вещества головного мозга запускается ряд патофизиологических процессов, приводящих в конечном итоге к гибели всех пулов церебральных клеток и необратимому повреждению проводящих путей, что клинически проявляется не только развитием очаговой неврологической симптоматики, но и когнитивными нарушениями. К таким взаимосвязанным процессам традиционно относят нейровоспаление, окислительный стресс, повреждение гематоэнцефалического барьера (ГЭБ) и разобщение метаболических связей между структурами нейрососудистой единицы, запуск прямого или опосредованного апоптоза [4]. В данном обзоре будут рассмотрены взаимосвязи нейровоспаления и активации системы гемостаза в рамках концепции тромбовоспаления.

МЕХАНИЗМЫ НЕЙРОВОСПАЛЕНИЯ

Принципиально различать два связанных ключевых патофизиологических механизма сосудистого церебрального повреждения – церебральную ишемию и гипоксию. Ишемия характеризуется снижением мозгового кровотока, тогда как гипоксия – это недостаток кислорода, процесс, вытекающий из ишемии [5]. Ишемия запускает нейровоспаление – процесс, характеризующийся активацией клеток врожденного иммунитета и глиальных клеток. Биомаркеры нейровоспаления были найдены в плазме и цереброспинальной жидкости пациентов с сосудистыми когнитивными нарушениями [6]. В экспериментальной работе Gervois P. et al. (2019) было показано, что у животных с моделью церебральной ишемии и гипоперфузии отмечается активация иммунных реакций, связанных с потерей белого вещества и гибелью нейронов; кроме того, такие морфологические изменения коррелировали с ухудшением обучаемости и памяти [7].

Запуск процессов нейровоспаления характеризуется 4 основными механизмами: активацией микроглии, повышением уровня цитокинов и хемокинов, накоплением периферических иммунных клеток и локальным повреждением вещества головного мозга [8]. Церебральное повреждение вызывает нарастание в веществе головного мозга целого ряда провоспалительных субстанций (цитокинов и хемокинов, свободных радикалов, вторичных мессенджеров, компонентов поврежденных клеток), которые активируют микроглию. Микроглия приобретает амебовидное состояние и сама начинает продуцировать провоспалительные цитокины и активные формы кислорода, тем самым усугубляя нейровоспаление и повреждение вещества головного мозга [9]. В условиях ишемического повреждения на начальном этапе нейровоспаление характеризуется тем, что активированная микроглия поглощает части погибших и фрагментированных клеток; далее происходит гиперпродукция свободных радикалов, стимулирующих экспрессию провоспалительных медиаторов (цитокинов, хемокинов, молекул адгезии и т.д.); на следующем этапе провоспалительные цитокины и активные формы кислорода приводят к повреждению митохондрий, ДНК, запуску апоптоза и разрушению ГЭБ; восстановление поврежденных тканей начинается тогда, когда уровень провоспалительных медиаторов снижается, активируется ангиогенез, нормализуется трофика церебральных клеток [10].

Гипоксия способствует нарастанию нейровоспаления, что характеризуется увеличением зоны ишемического повреждения и снижением процессов нейропластичности [11]. Гипоксия влечет за собой нарастание экспрессии фактора транскрипции, индуцируемого гипоксией, в частности, изоформы 1α (HIF-1α). В дальнейшем это способствует увеличению экспрессии провоспалительных цитокинов, например ядерного фактора NF-κB, что, в свою очередь, приводит к экспрессии других ответственных за воспаление генов [12]. Наряду с этим гипоксия негативно влияет на экспрессию регуляторной микроРНК, ответственной за активацию микроглии [13].

Клетки врожденного иммунитета необходимы для нормального функционирования головного мозга. Различные типы клеток, включая нейроны, микроглию и астроциты, формируют специфическую систему, поддерживающую иммунную защиту головного мозга и направленную на элиминацию экзогенных и эндогенных патологических белков и клеток [14]. В центральной нервной системе (ЦНС) среди глиальных клеток на долю астроцитов приходится порядка 19–40%, микроглиальные клетки составляют около 10%, олигодендроциты – от 45 до 75%. Остальные клетки, обозначаемые как NG2, являются предшественниками олигодендроцитов [15]. В ряде исследований было показано, что в условиях экспериментальной модели церебральной гипоперфузии отмечается активация глиальных клеток, вызывающая запуск процессов нейровоспаления, повреждение белого вещества (преимущественно в мозолистом теле), потерю нейронов в ключевых зонах мозга, например, в гиппокампе, с последующим развитием когнитивных нарушений [16, 17].

Микроглия – клетка врожденного иммунитета, находящаяся в пределах ЦНС и представляющая собой фагоцит. Основной ее функцией является удаление из ЦНС нежелательных соединений как при развитии головного мозга, так и в патологических условиях [18]. Микроглия – важнейшая клетка нейрососудистой единицы, которая контролирует церебральный гомеостаз, незамедлительно активируясь при возникновении повреждения или инфекции [19]. В ряде экспериментальных исследований, посвященных хронической церебральной гипоперфузии, было продемонстрировано, что микроглия в активированном состоянии может приобретать два взаимно противоположных фенотипа – провоспалительный (M1) и противовоспалительный (M2) [20]. В исследовании Zhang L.-Y. et al. на модели билатеральной перевязки общих сонных артерий у грызунов (эта модель, учитывая замк­нутость Виллизиева круга у большинства грызунов, в достаточной мере соответствует хроническому состоянию церебральной гипоперфузии) было обнаружено, что микроглия активируется и активно фагоцитирует миелин. Данный процесс имел сильную корреляционную связь с активацией системы комплемента и нарушением процессов памяти и обучения, кроме того, в основной группе животных в веществе головного мозга значимо нарастали экспрессия рецепторов-маркеров провоспалительного статуса микроглии (CD86 и CD16), уровень провоспалительных цитокинов интерлейкина 6 (ИЛ-6), фактора некроза опухоли-альфа (ФНО-α) и ИЛ-1β [21]. В другом исследовании было установлено, что на третий день после моделирования хронической церебральной гипоперфузии в микроглии, локализующейся преимущественно в белом веществе, нарастает экспрессия МНС-I и МНС- II (основных молекул главного комплекса гистосовместимости, служащих ключевыми маркерами поврежденных клеток), а также уровень матриксной металлопротеиназы II [22]. В клинических условиях было показано, что у пациентов с сосудистыми когнитивными нарушениями наблюдается высокий уровень матриксных металлопротеиназ [23].

Астроциты, наряду с микроглией, также вовлечены в процесс нейровоспаления при сосудистых когнитивных нарушениях. Так, в экспериментальном исследовании Price B.R. et al. на модели гипергомоцистеинемии, одного из ключевых сосудистых факторов риска, было продемонстрировано, что уже через 10 нед диеты с исключением витаминов В6, В12 и фолиевой кислоты выявляется разрушение астроцитарных ножек (значимо снижалась экспрессия ключевых белков астроцитов: дистрофина-1, AQP4, Kir4.1 и MaxiK/BK), причем эти изменения прямо коррелировали с прогрессированием когнитивных нарушений. Также исследователи обнаружили значимую активацию микроглии (нарастание экспрессии микроглиального маркера CD11b) и высокий уровень провоспалительных цитокинов ИЛ-1β, NF-κB, ИЛ-12 и ИЛ-6 [24]. В другом исследовании, также выполненном на модели гипергомоцистеинемии, авторы выявили в астроцитах высокий уровень экспрессии матриксной металлопротеиназы 9, фермента, ответственного за разрушение α- и β-дистрогликанов, белков, связывающих астроцитарные ножки с базальной мембраной капилляров [25]. Олигодендроциты также страдают в условиях хронической церебральной гипоперфузии: так, в экспериментальной работе Dean J.M. et al. было установлено значимое снижение количества прогениторных клеток олигодендроцитов [26].

Таким образом, как было описано выше, при сосудистых когнитивных нарушениях отмечается значимое повышение ряда провоспалительных медиаторов, которые определят запуск целого ряда вне- и внутриклеточных сигнальных путей, приводящих к повреждению клеток и проводящих путей головного мозга. Высокий уровень экспрессии таких провоспалительных цитокинов, как ИЛ-1β, ИЛ-6, ФНО-α, наряду с активацией окислительного стресса был показан в условиях экспериментального моделирования хронической церебральной гипоперфузии [27].

ВЗАИМОСВЯЗЬ ТРОМБОЗА И НЕЙРОВОСПАЛЕНИЯ

Существует множество потенциальных точек взаимодействия между тромбозом и воспалением. Все подобные механизмы участвуют в повреждении вещества головного мозга не только вследствие ишемии на фоне нарушения церебрального кровотока при тромбообразовании, но и за счет вторичных механизмов. Наиболее изученными из таких аспектов тромбовоспаления являются [28]:

1. механизмы, связанные с активностью фактора Виллебранда (ФВ) и тромбоцитами;

2. механизмы, связанные с системой контактного пути свертывания крови и кинин-калликреиновой системой;

3. механизмы, связанные с клеточными компонентами врожденного иммунитета.

Одна из ведущих функций ФВ в норме – обеспечение адгезии тромбоцитов [29]. Секреция молекул ФВ в значительной мере осуществляется эндотелиоцитами. Взаимодействуя с коллагеном, ламинином и иными компонентами субэндотелиального матрикса в условиях высокого напряжения сдвига [30, 31], ФВ прикрепляется к поврежденной сосудистой стенке и создает условия для многоступенчатого процесса адгезии тромбоцитов. Сначала возникает быстро формирующаяся обратимая связь ФВ и тромбоцитарного рецептора GpIb-IX-V, скорость движения тромбоцитов в потоке крови снижается, и далее происходит необратимая фиксация ФВ к тромбоцитарному интегрину αIIbβ3 [30, 32]. После этого тромбоциты дополнительно прикрепляются к коллагену, ламинину и иным компонентам субэндотелиального матрикса при помощи рецептора GpVI [29–31, 33].

Имеется достаточно данных, полученных в экспериментальных и клинических условиях, которые свидетельствуют о важной роли ФВ как связующего звена между тромбозом и воспалением. Так, ФВ, находящийся в эндотелиоцитах, участвует в регуляции внутриклеточной сортировки P-селектина, ИЛ-8 [34, 35]. В свою очередь, ИЛ-8 и ФНО-α способны вызывать секрецию высокомолекулярной высокотромбогенной формы ФВ [36], образуя таким образом механизм положительной обратной связи. Кроме того, ФВ может обеспечивать локальную адгезию лейкоцитов, моноцитов и сегментоядерных нейтрофилов [37, 38] и выступать в качестве области прикрепления таких провоспалительных агентов, как компоненты альтернативного пути системы комплемента [39] и нейтрофильные внеклеточные ловушки, активно образуемые нейтрофилами при их активации [37]. Также следует отметить, что активация альтернативного пути системы комплемента приводит и к активации микроглии [40]. В систематическом обзоре и метаанализе Loures C.M.G. et al. было показано, что при сосудистой деменции отмечается более высокая системная концентрация ФВ при сопоставлении с группой контроля [41].

Фиксация тромбоцитов к сосудистой стенке с последующей их активацией приводит к ряду провоспалительных изменений. Так происходит образование тромбоцитарных микрочастиц (микровезикул, экзосом) с провоспалительной и протромботической активностью [42]. Вовлечение тромбоцитарного гликопротеина GpVI связано с повышением цитотоксической активности нейтрофилов [43]. Активированные тромбоциты секретируют ряд провоспалительных соединений, таких как ИЛ-1α, ИЛ-1β, трансформирующий фактор роста TGF-β, гистамин, серотонин, растворимый лиганд CD40 (CD40L) [44–46]. Предполагается, что модуляция процессов нейровоспаления активированными тромбоцитами вносит важный вклад в формирование сосудистых когнитивных нарушений у пациентов с сосудистыми факторами риска [47].

Механизмы тромбовоспаления, связанные с системой контактного пути свертывания крови и кинин-калликреиновой системой, в настоящий момент изучены недостаточно. Тем не менее существующие исследования подтверждают их важную связующую роль между процессами коагуляции и воспаления [48]. Активация этих систем происходит при контакте XII фактора свертывания с негативно заряженными чужеродными поверхностями или же с микрочастицами полифосфатов на поверхности активированных тромбоцитов [49]. Активированный фактор XII не только обеспечивает запуск процесса коагуляции через активацию XI фактора, но и конвертирует прекалликреин плазмы крови в калликреин, который, в свою очередь, расщепляет кининоген до брадикинина, обладающего значительной провоспалительной активностью [28]. Кроме того, калликреин плазмы активирует фактор XII в плазме по механизму положительной обратной связи, что дополнительно усиливает воспалительный ответ [28]. Провоспалительные эффекты кининовой системы реализуются через активацию брадикининовых рецепторов B1R и B2R, а инактивация B1R оказывает защитное действие, уменьшая локальный постишемический воспалительный ответ и отек вещества головного мозга [50]. Было продемонстрировано, что активация калликреин-кининовой системы в модели ишемического инсульта у мышей усиливала явления микротромбоза, нейровоспаления с повышением проницаемости ГЭБ [51]. Также выявлено, что активация калликреин-кининовой системы вносит значимый вклад в прогрессирование когнитивных нарушений сосудистого генеза [52].

Клетки, вовлеченные в реализацию функций врожденного иммунитета, не только обеспечивают защитные функции организма, но и участвуют во множестве патологических реакций, включая нейровоспаление. Одну из ведущих ролей в нейровоспалении играют нейтрофилы, при избыточной активации которых происходит повышение проницаемости ГЭБ, усиление отека вещества головного мозга; помимо этого, протеолитические ферменты нейтрофилов оказывают прямое нейротоксическое действие [53]. Активированные тромбоциты выделяют хемокины, такие как CCL5, CXCL4, CXCL5 и MIF [2], способствующие локальному привлечению нейтрофилов; более того, как говорилось выше, этому процессу также способствует активация ФВ. Нейтрофилы, взаимодействуя с поврежденной эндотелиальной выстилкой, в свою очередь инициируют процесс тромбообразования через механизмы, связанные с тканевым фактором [54], а нейтрофильные сериновые протеазы, включая эластазу, взаимодействуют с факторами свертывания плазмы крови, вызывая запуск процессов коагуляционного гемостаза [55]. Наряду с этим субъединица GPIbα тромбоцитарного интегрина GpIb-IX-V напрямую взаимодействует с интегрином αMβ2 на поверхности нейтрофилов, что способствует усилению тромбообразования [56] и тромбоцит-индуцированной секреции высокотромбогенных нейтрофильных внеклеточных ловушек [2].

Взаимодействие тромбоцитов и нейтрофилов усиливается за счет нескольких систем положительной обратной связи, в том числе за счет секреции нейтрофилами кателицидинов, связывающихся с поверхностью тромбоцитов и вызывающих их дегрануляцию с секрецией медиаторов воспаления [57]. В свою очередь тромбоциты после взаимодействия с кателицидинами индуцируют активацию нейтрофилов и выделение нейтрофильных внеклеточных ловушек [57]. Одним из важнейших следствий активации нейтрофилов становится нарушение проницаемости ГЭБ и их миграция в ЦНС, что в конечном итоге индуцирует процессы нейродегенерации и усиливает прогрессирование когнитивного снижения [58].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Таким образом, существует достаточно данных, свидетельствующих о том, что процессы тромбоза и воспаления тесно взаимосвязаны друг с другом и играют важную роль в патофизиологии церебральной ишемии. Активация общих механизмов, описываемых в рамках концепции тромбовоспаления, является важным фактором повреждения вещества головного мозга. Это указывает на необходимость комплексного мультимодального подхода к ведению пациентов с цереброваскулярными заболеваниями, в особенности при наличии сосудистых когнитивных нарушений. Возможные подходы к коррекции тромбовоспаления требуют дальнейшего изучения, а поиск новых терапевтических мишеней для его коррекции остается одним из приоритетных направлений для изучения при цереброваскулярных заболеваниях. Такие потенциальные подходы к профилактике или модификации процесса прогрессирования церебрального поражения сосудистого генеза, как коррекция активности ФВ, модуляция активности XII фактора свертывания и коррекция взаимодействия тромбоцит–нейтрофил, могут служить перспективными направлениями для изучения в будущих клинических исследованиях.

Список литературы

1. Engelmann B., Massberg S. Thrombosis as an intravascular effector of innate immunity. Nat Rev Immunol. 2013; 13(1): 34–45.https://dx.doi.org/10.1038/nri3345.

2. Stark K., Massberg S. Interplay between inflammation and thrombosis in cardiovascular pathology. Nat Rev Cardiol. 2021; 18(9): 666–82. https://dx.doi.org/10.1038/s41569-021-00552-1

3. Skrobot O.A., Black S.E., Chen C. et al. Progress toward standardized diagnosis of vascular cognitive impairment: Guidelines from the Vascular Impairment of Cognition Classification Consensus Study. Alzheimers Dement J Alzheimers Assoc. 2018; 14(3): 280–92. https://dx.doi.org/10.1016/j.jalz.2017.09.007.

4. Anrather J., Iadecola C. Inflammation and stroke: An overview. Neurother J Am Soc Exp Neurother. 2016; 13(4): 661–70.https://dx.doi.org/10.1007/s13311-016-0483-x.

5. Nalivaeva N.N., Rybnikova E.A. Editorial: Brain hypoxia and ischemia: New insights into neurodegeneration and neuroprotection. Front Neurosci. 2019; 13: 770. https://dx.doi.org/10.3389/fnins.2019.00770.

6. Engelhart M.J., Geerlings M.I., Meijer J. et al. Inflammatory proteins in plasma and the risk of dementia: The Rotterdam study. Arch Neurol. 2004; 61(5): 668–72. https://dx.doi.org/10.1001/archneur.61.5.668.

7. Gervois P., Lambrichts I. The emerging role of triggering receptor expressed on myeloid cells 2 as a target for immunomodulation in ischemic stroke. Front Immunol. 2019; 10: 1668. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2019.01668.

8. Belarbi K., Cuvelier E., Bonte M.-A. et al. Glycosphingolipids and neuroinflammation in Parkinson’s disease. Mol Neurodegener. 2020; 15(1): 59. https://dx.doi.org/10.1186/s13024-020-00408-1.

9. DiSabato D.J., Quan N., Godbout J.P. Neuroinflammation: The devil is in the details. J Neurochem. 2016; 139 Suppl 2: 136–53.https://dx.doi.org/10.1111/jnc.13607.

10. Lin L., Wang X., Yu Z. Ischemia-reperfusion injury in the brain: Mechanisms and potential therapeutic strategies. Biochem Pharmacol Open Access. 2016; 5(4): 213. https://dx.doi.org/10.4172/2167-0501.1000213.

11. Imtiyaz H.Z., Simon M.C. Hypoxia-inducible factors as essential regulators of inflammation. Curr Top Microbiol Immunol. 2010; 345: 105–20. https://dx.doi.org/10.1007/82_2010_74.

12. Davies A.L., Desai R.A., Bloomfield P.S. et al. Neurological deficits caused by tissue hypoxia in neuroinflammatory disease. Ann Neurol. 2013; 74(6): 815–25. https://dx.doi.org/10.1002/ana.24006.

13. Khoshnam S.E., Winlow W., Farzaneh M. The interplay of MicroRNAs in the inflammatory mechanisms following ischemic stroke. J Neuropathol Exp Neurol. 2017; 76(7): 548–61. https://dx.doi.org/10.1093/jnen/nlx036.

14. Zhang S.-Z., Wang Q.-Q., Yang Q.-Q. et al. NG2 glia regulate brain innate immunity via TGF-β2/TGFBR2 axis. BMC Med. 2019; 17(1): 204. https://dx.doi.org/10.1186/s12916-019-1439-x.

15. Nishiyama A. Polydendrocytes: NG2 cells with many roles in development and repair of the CNS. Neurosci Rev J Bringing Neurobiol Neurol Psychiatry. 2007; 13(1): 62–76. https://dx.doi.org/10.1177/1073858406295586.

16. Xu X., Zhang B., Lu K. et al. Prevention of hippocampal neuronal damage and cognitive function deficits in vascular dementia by dextromethorphan. Mol Neurobiol. 2016; 53(5): 3494–502. https://dx.doi.org/10.1007/s12035-016-9786-5.

17. Farkas E., Luiten P.G.M., Bari F. Permanent, bilateral common carotid artery occlusion in the rat: a model for chronic cerebral hypoperfusion-related neurodegenerative diseases. Brain Res Rev. 2007; 54(1): 162–80.https://dx.doi.org/10.1016/j.brainresrev.2007.01.003.

18. Garaschuk O., Verkhratsky A. Physiology of microglia. Methods Mol Biol. 2019; 2034: 27–40.https://dx.doi.org/10.1007/978-1-4939-9658-2_3.

19. Hanisch U.-K., Kettenmann H. Microglia: Active sensor and versatile effector cells in the normal and pathologic brain. Nat Neurosci. 2007; 10(11): 1387–94. https://dx.doi.org/10.1038/nn1997.

20. Fernando M.S., Simpson J.E., Matthews F. et al. White matter lesions in an unselected cohort of the elderly: molecular pathology suggests origin from chronic hypoperfusion injury. Stroke. 2006; 37(6): 1391–98. https://dx.doi.org/10.1161/01.STR.0000221308.94473.14.

21. Zhang L.-Y., Pan J., Mamtilahun M. et al. Microglia exacerbate white matter injury via complement C3/C3aR pathway after hypoperfusion. Theranostics. 2020; 10(1): 74–90. https://dx.doi.org/10.7150/thno.35841.

22. Ma Y., Wang J., Wang Y., Yang G.-Y. The biphasic function of microglia in ischemic stroke. Prog Neurobiol. 2017; 157: 247–72.https://dx.doi.org/10.1016/j.pneurobio.2016.01.005.

23. Bjerke M., Zetterberg H., Edman A. et al. Cerebrospinal fluid matrix metalloproteinases and tissue inhibitor of metalloproteinases in combination with subcortical and cortical biomarkers in vascular dementia and Alzheimer’s disease. J Alzheimers Dis JAD. 2011; 27(3): 665–76. https://dx.doi.org/10.3233/JAD-2011-110566.

24. Price B.R., Norris C.M., Sompol P., Wilcock D.M. An emerging role of astrocytes in vascular contributions to cognitive impairment and dementia. J Neurochem. 2018; 144(5): 644–50. https://dx.doi.org/10.1111/jnc.14273.

25. Michaluk P., Kolodziej L., Mioduszewska B. et al. Beta-dystroglycan as a target for MMP-9, in response to enhanced neuronal activity. J Biol Chem. 2007; 282(22): 16036–41. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.M700641200.

26. Dean J.M., van de Looij Y., Sizonenko S.V. et al. Delayed cortical impairment following lipopolysaccharide exposure in preterm fetal sheep. Ann Neurol. 2011; 70(5): 846–56. https://dx.doi.org/10.1002/ana.22480.

27. Fu X., Zhang J., Guo L. et al. Protective role of luteolin against cognitive dysfunction induced by chronic cerebral hypoperfusion in rats. Pharmacol Biochem Behav. 2014; 126: 122–30. https://dx.doi.org/10.1016/j.pbb.2014.09.005.

28. De Meyer S.F., Denorme F., Langhauser F. et al. Thromboinflammation in stroke brain damage. Stroke. 2016; 47(4): 1165–72.https://dx.doi.org/10.1161/STROKEAHA.115.011238.

29. Rauch A., Wohner N., Christophe O.D. et al. On the versatility of von Willebrand factor. Mediterr J Hematol Infect Dis. 2013; 5(1): e2013046. https://dx.doi.org/10.4084/MJHID.2013.046.

30. Sadler J.E. Biochemistry and genetics of von Willebrand factor. Annu Rev Biochem. 1998; 67: 395–424.https://dx.doi.org/10.1146/annurev.biochem.67.1.395.

31. Inoue O., Suzuki-Inoue K., Ozaki Y. Redundant mechanism of platelet adhesion to laminin and collagen under flow - Involvement of von Willebrand factor and glycoprotein Ib-IX-V. J Biol Chem. 2008; 283(24): 16279–82. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.C700241200.

32. Nieswandt B., Watson S.P. Platelet-collagen interaction: Is GPVI the central receptor? Blood. 2003; 102(2): 449–61.https://dx.doi.org/10.1182/blood-2002-12-3882.

33. Rumbaut R.E., Thiagarajan P. Platelet-vessel wall interactions in hemostasis and thrombosis. Morgan & Claypool Life Sciences. 2010. Accessed October 19, 2016. URL: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK53450/ (date of access – 01.11.2022).

34. Michaux G., Pullen T.J., Haberichter S.L., Cutler D.F. P-selectin binds to the D’–D3 domains of von Willebrand factor in Weibel–Palade bodies. Blood. 2006; 107(10): 3922–24. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2005-09-3635.

35. Rondaij M.G., Bierings R., Kragt A. et al. Dynamics and plasticity of Weibel–Palade bodies in endothelial cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006; 26(5): 1002–7. https://dx.doi.org/10.1161/01.ATV.0000209501.56852.6c.

36. Bernardo A., Ball C., Nolasco L. et al. Effects of inflammatory cytokines on the release and cleavage of the endothelial cell-derived ultralarge von Willebrand factor multimers under flow. Blood. 2004; 104(1): 100–6. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2004-01-0107.

37. Gragnano F., Sperlongano S., Golia E. et al. The role of von Willebrand factor in vascular inflammation: From pathogenesis to targeted therapy. Mediators Inflamm. 2017; 2017: 5620314. https://dx.doi.org/10.1155/2017/5620314.

38. Pendu R., Terraube V., Christophe O.D. et al. P-selectin glycoprotein ligand 1 and beta 2-integrins cooperate in the adhesion of leukocytes to von Willebrand factor. Blood. 2006; 108(12): 3746–52. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2006-03-010322.

39. Turner N.A., Moake J. Assembly and activation of alternative complement components on endothelial cell-anchored ultra-large von Willebrand factor links complement and hemostasis-thrombosis. Plos One. 2013; 8(3): e59372.https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0059372.

40. Schartz N.D., Tenner A.J. The good, the bad, and the opportunities of the complement system in neurodegenerative disease. J Neuroinflammation. 2020; 17(1): 354. https://dx.doi.org/10.1186/s12974-020-02024-8.

41. Loures C.M.G., Duarte R.C.F., Silva M.V.F. et al. Hemostatic abnormalities in dementia: A systematic review and meta-analysis. Semin Thromb Hemost. 2019; 45(5): 514–22. https://dx.doi.org/10.1055/s-0039-1688444.

42. Lv J.-X., Kong Q., Ma X. Current advances in circulating inflammatory biomarkers in atherosclerosis and related cardio-cerebrovascular diseases. Chronic Dis Transl Med. 2017; 3(4): 207–12. https://dx.doi.org/10.1016/j.cdtm.2017.09.002.

43. Gros A., Syvannarath V., Lamrani L. et al. Single platelets seal neutrophil-induced vascular breaches via GPVI during immune-complex-mediated inflammation in mice. Blood. 2015; 126(8): 1017–26. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2014-12-617159.

44. Duerschmied D., Bode C., Ahrens I. Immune functions of platelets. Thromb Haemost. 2014; 112(4): 678–91.https://dx.doi.org/10.1160/TH14-02-0146.

45. Thornton P., McColl B.W., Greenhalgh A. et al. Platelet interleukin-1alpha drives cerebrovascular inflammation. Blood. 2010; 115(17): 3632–39. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2009-11-252643.

46. Ishikawa M., Vowinkel T., Stokes K.Y. et al. CD40/CD40 ligand signaling in mouse cerebral microvasculature after focal ischemia/reperfusion. Circulation. 2005; 111(13): 1690–96. https://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.0000160349.42665.0C.

47. Stellos K., Katsiki N., Tatsidou P. et al. Association of platelet activation with vascular cognitive impairment: implications in dementia development? Curr Vasc Pharmacol. 2014; 12(1): 152–54. https://dx.doi.org/10.2174/157016111201140327164641.

48. Wu Y. Contact pathway of coagulation and inflammation. Thromb J. 2015; 13: 17. https://dx.doi.org//10.1186/s12959-015-0048-y.

49. Verhoef J.J.F., Barendrecht A.D., Nickel K.F. et al. Polyphosphate nanoparticles on the platelet surface trigger contact system activation. Blood. 2017; 129(12): 1707–17. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2016-08-734988.

50. Austinat M., Braeuninger S., Pesquero J.B. et al. Blockade of bradykinin receptor B1 but not bradykinin receptor B2 provides protection from cerebral infarction and brain edema. Stroke. 2009; 40(1): 285–93. https://dx.doi.org/10.1161/STROKEAHA.108.526673.

51. Langhauser F., Gob E., Kraft P. et al. Kininogen deficiency protects from ischemic neurodegeneration in mice by reducing thrombosis, blood-brain barrier damage, and inflammation. Blood. 2012; 120(19): 4082–92. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2012-06-440057.

52. Ashby E.L., Love S., Kehoe P.G. Assessment of activation of the plasma kallikrein-kinin system in frontal and temporal cortex in Alzheimer’s disease and vascular dementia. Neurobiol Aging. 2012; 33(7): 1345–55.https://dx.doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2010.09.024.

53. Sun Y., Langer H.F. Platelets, thromboinflammation and neurovascular disease. Front Immunol. 2022; 13: 843404.https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.843404.

54. Darbousset R., Thomas G.M., Mezouar S. et al. Tissue factor-positive neutrophils bind to injured endothelial wall and initiate thrombus formation. Blood. 2012; 120(10): 2133–43. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2012-06-437772.

55. Massberg S., Grahl L., von Bruehl M.-L. et al. Reciprocal coupling of coagulation and innate immunity via neutrophil serine proteases. Nat Med. 2010; 16(8): 887–96. https://dx.doi.org/10.1038/nm.2184.

56. Wang Y., Gao H., Shi C. et al. Leukocyte integrin Mac-1 regulates thrombosis via interaction with platelet GPIbα. Nat Commun. 2017; 8: 15559. https://dx.doi.org/10.1038/ncomms15559.

57. Pircher J., Czermak T., Ehrlich A. et al. Cathelicidins prime platelets to mediate arterial thrombosis and tissue inflammation. Nat Commun. 2018; 9(1): 1523. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-018-03925-2.

58. Bowman G.L., Dayon L., Kirkland R. et al. Blood-brain barrier breakdown, neuroinflammation, and cognitive decline in older adults. Alzheimers Dement J Alzheimers Assoc. 2018; 14(12): 1640–50. https://dx.doi.org/10.1016/j.jalz.2018.06.2857.

Об авторах / Для корреспонденции

Иван Алексеевич Кольцов, к.м.н., старший научный сотрудник отдела нейроиммунологии ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России, старший научный сотрудник научно-исследовательской лаборатории сосудистых заболеваний головного мозга, ассистент кафедры неврологии, нейрохирургии и медицинской генетики лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: koltsov_ia@rsmu.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9900-4073
Иван Александрович Щукин, к.м.н., доцент кафедры неврологии, нейрохирургии и медицинской генетики лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет
им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, старший научный сотрудник отдела нейроиммунологии ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: ivashchukin@gmail.com. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6308-9706
Владимир Иванович Чубыкин, ассистент кафедры неврологии, нейрохирургии и медицинской генетики лечебного факультета, старший научный сотрудник научно-исследовательской лаборатории сосудистых заболеваний головного мозга ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет
им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: chub_vova@list.ru
Михаил Сергеевич Фидлер, ассистент кафедры неврологии, нейрохирургии и медицинской генетики лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: rbmi@mail.ru

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.