ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

МикроРНК-1 и микроРНК-133: малые молекулы с большим значением в аспекте сердечно-сосудистых заболеваний

А.М. Алиева, Н.В. Теплова, А.В. Бутенко, Е.Е. Аверин, М.Ф. Ахмедова, Ю.А. Шихова, Р.К. Валиев, М.Н. Сарыев, И.А. Котикова, И.Г. Никитин

1) ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, г. Москва; 2) ФГБНУ «Российский научный центр хирургии им. академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России, г. Москва; 3) Клиника AKFA Medline, г. Ташкент; 4) ГБУЗ «Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы»
Аннотация. Фундаментальные и клинические исследования четко продемонстрировали значение микроРНК (miRNA) в регуляции дифференцировки, роста, пролиферации и апоптоза клеток. Это влияние miRNA распространяется и на кардиоваскулярную систему. Экспериментальные исследования показали участие микроРНК (miRNA) как в нормальном развитии сердца и сосудов, так и в формировании таких патологических состояний, как гипертрофия миокарда и его ремоделирование, недостаточность кровообращения. MiRNAs участвуют в мобилизации клеток-предшественников и других вспомогательных клеток из костного мозга в периферическое кровообращение, что является важным звеном в восстановлении функции сердца после ишемического его повреждения. Представленный литературный обзор указывает на потенциально важную диагностическую и прогностическую значимость оценки miRNA-1 и miRNA-133.

Ключевые слова

биологические маркеры
микроРНК
ишемическая болезнь сердца
гипертрофия сердца
аритмия

ВВЕДЕНИЕ

Идентификация нового значимого уровня регуляции активности генов с помощью малых некодирующих молекул РНК – микроРНК (miRNA) – можно определенно считать одним из наиболее выдающихся открытий современной науки. Это обусловлено тем, что подавление экспрессии генов под влиянием miRNA служит исключительно важным универсальным механизмом, широко вовлеченным в большинство внутриклеточных сигнальных путей [1].

Фундаментальные и клинические исследования четко продемонстрировали значение miRNA в регуляции дифференцировки, роста, пролиферации и апоптоза клеток [1–4]. Это влияние miRNA распространяется и на кардиоваскулярную систему. Экспериментальные исследования показали участие miRNA не только в нормальном развитии сердца и сосудов, но и в формировании таких патологических состояний, как гипертрофия миокарда и его ремоделирование, недостаточность кровообращения [4–6]. MiRNA вовлечены в мобилизацию клеток-предшественников и других вспомогательных клеток из костного мозга в периферическое кровообращение, что является важным звеном в восстановлении функции сердца после ишемического повреждения [4].

Значимые изменения уровня экспрессии miRNA при многих болезнях позволили рассматривать их в качестве перспективных биомаркеров. Для них характерны три ключевых критерия так называемого идеального маркера: 1) достаточно высокая стабильность в биологических жидкостях; 2) устойчивость к влияниям извне, что позволяет эффективно выделять циркулирующие miRNAs из биологических жидкостей; 3) сопоставимость профилей miRNAs в норме у мужчин и женщин, а также у людей разных возрастных категорий. В то же время основной недостаток miRNAs как биологического маркера – высокая вариабельность уровня их экспрессии, зависящая от многих факторов [7].

К наиболее часто используемым методам выделения miRNA относятся полимеразная цепная реакция в реальном времени и флуоресцентная гибридизация in situ.

В настоящее время miRNAs используются в качестве диагностических биомаркеров при многих сердечно-сосудистых заболеваниях (ССЗ) [2, 4, 5, 8, 9]. В представленном обзоре проанализированы основные исследования, которые указывают на потенциальную роль miRNA-1 и miRNA-133 в развитии ССЗ.

МЕТОДОЛОГИЯ ПОИСКА ИСТОЧНИКОВ

Анализ источников литературы проводился в базах данных PubMed, РИНЦ, MedLine, Google Scholar, Science Direct, рассматривались зарубежные и отечественные статьи. Поиск проводился по следующим ключевым словам: «микроРНК-1», «микроРНК-133», «сердце», «сердечно-сосудистые заболевания», miRNA-1, miRNA-133, heart, cardiovascular diseases.

СТРОЕНИЕ И ФУНКЦИИ микроРНК-1 И микроРНК-133

MiRNA представляет собой разновидность эндогенной, короткой (18–24 нуклеотидов), высококонсервативной некодирующей РНК [4]. MiRNAs впервые были открыты у Caenorhabditis elegans и подробно описаны Lee R. et al. [10]. Это стабильная молекула с периодом полужизни почти 24 ч [11]. MiRNA первичного предшественника транскрибируются из гена Pol II (полимераза II) и впоследствии расщепляются на miRNA-предшественники через комплекс Drosha (фермент класса 2 рибонуклеаза III)/DGCR8 (РНК-связывающий белок). Затем miRNA-предшественники переносятся в цитоплазму через exportin-5/Ran-GTP (белки внутриядерного транспорта), в котором они дополнительно расщепляются при участии Dicer (фермента с каталитическим центром РНКазы III)/TRBP (белка, связывающего трансактивирующую РНК) и далее раскручиваются в их зрелую форму [12]. В настоящее время в человеческом организме обнаружено более 2000 miRNAs, которые, по-видимому, контролируют около 60% генов [13]. Для каждой отдельной miRNAs существует множество мишеней, при этом многие гены обладают сайтами распознавания различных miRNAs [13].

MiRNAs через различные пути регулируют развитие сердца в эмбриональном периоде, его ремоделирование и регенерацию, эндотелиальную функцию, васкулогенез и неоангиогенез [4]. Zhao Y. et al. выявили, что удаление фермента Dicer из кардиомиоцитов и эпикарда мышей приводило к летальным дефектам сердечно-сосудистой системы [14]. Экспрессия miRNA-133 и miRNA-1 влияет на способность миобластов образовывать миотубы [15]. MiRNA-1 участвует в миогенезе путем нацеливания на гистондеацетилазу 4 (HDAC4); в свою очередь, miRNA-133 усиливает пролиферацию миобластов за счет подавления сывороточного фактора ответа (SRF) [16]. В эмбриональных стволовых клетках miRNA-1 и miRNA-133 синергетически индуцируют образование мезодермы и их дефицит приводит к различным порокам сердца [17]. Valkov N. et al., Zhang X. et al. наблюдали высокую экспрессию miRNA-1 и miRNA-133 в сердце при повреждении [18, 19]. Согласно результатам исследования Werner J. et al., miRNA-133 и активатор транскрипции GATA4 ингибируют путь Snai1, поэтому предполагается, что они играют синергетическую роль в «перепрограммировании» сердца [20]. Cheng M. et al. обнаружили, что комбинированная инъекция miRNA-133, miRNA-1, miRNA-499 и miRNA-208 в ишеминизированную ткань миокарда индуцирует фибробласты к трансформации в подобные кардиомиоцитам клетки, которые затем улучшают сердечную функцию [21]. Наряду с этим, MiRNA-1 индуцирует дифференцировку эмбриональных стволовых клеток в сердечные клетки, однако необходимо дополнительно исследовать, участвует ли она в «перепрограммировании» сердца посредством ингибирования сигнального пути Snai1 [17].

Как известно, комбинация некоторых факторов транскрипции (таких как MEF2C, TBX5 и GATA4, MEF2C, TBX5, Hand2 и GATA4) способствует трансдифференциации фибробластов в функциональные кардиомиоцитоподобные клетки [22]. Nam Y. et al. установили, что добавление miRNA- 133 и miRNA- 1 к Hand2, MYOCD, TBX5 и GATA4 еще больше увеличивает скорость трансформации фибробластов [23]. Christoforou N. et al. продемонстрировали, что уровни РНК гиперэкспрессированных факторов транскрипции TBX5, MEF2C и GATA4 значительно снижались под действием miRNA-133 и miRNA-1 [24]. Предполагается, что это противоречие может быть связано с конечной концентрацией miRNA- 133 и miRNA-1. Согласно данным Muraoka N. et al., miRNA-133 индуцирует превращение фибробластов в функциональные кардиомиоциты путем ингибирования Snai1 [22]. Путь miRNA-133/Snai1 является основным путем участия miRNA-133 в «перепрограммировании» сердца [22].

РОЛЬ MIR-1 И MIR-133 ПРИ ИШЕМИЧЕСКОЙ БОЛЕЗНИ СЕРДЦА

Как было показано Islas J.F. et al., уровни miRNA-1, miRNA-133, miRNA-499 и miRNA-208 в ишемизированном миокарде повышены [12], но механизмы этого явления до конца не изучены. При ишемии миокарда активируется один из наиболее важных транскрипционных факторов – белок CREB (связывающий элемент ответа циклического аденозинмонофосфата), что приводит к транскрипции miRNA-1 и других miRNAs [4, 13].

При повреждении сердца miRNA-1, miRNA-133, miRNA-499 и miRNA-208 быстро высвобождаются в периферическую кровь. MiRNA-499, miRNA-208 и miRNA-1 в основном, а miRNA-133 частично переносятся циркулирующими экзосомами [4, 21]. Экзосомные miRNAs избирательно и предпочтительно переносятся в моноциты костного мозга. MiRNA-1, miRNA-499 и miRNA-208 ингибируют экспрессию рецептора хемокинов CXCR4 и опосредуют мобилизацию клеток-предшественников. Как уже было отмечено ранее, мобилизация клеток-предшественников и других вспомогательных клеток в костном мозге в периферическое кровообращение выступает ключевым элементом в восстановлении сердечной функции после ишемического повреждения сердца [4, 21]. MiRNA- 133 также оказывает сильнейшее ингибирующее действие на экспрессию CXCR4 [4, 21].

Pinchi E. et al. изучали экспрессию miRNAs в образцах тканей сердца лиц, умерших от острого инфаркта миокарда (ОИМ) или внезапной сердечной смерти (группой контроля служили лица, скончавшиеся не от ССЗ). Результаты исследования продемонстрировали подавление всех miRNAs в группе ОИМ по сравнению с группой внезапной сердечной смерти и контролем. Выбранные miRNAs показали высокую точность в различении внезапной сердечной смерти от ОИМ (miRNA-1 и miRNA-499) и ОИМ от контроля (miRNA-208) [25].

Ewelina K. et al. выполнили исследование по оценке уровней miRNA-1 и miRNA-126 при ОИМ. Концентрация обеих miRNAs оказалась достоверно и значительно выше у пациентов с ОИМ по сравнению со здоровыми людьми. Кроме того, miRNA-1 положительно коррелировала с максимальной концентрацией тропонина I (p=0,02) [26].

Исследование Ma Q. et al. было направлено на оценку уровней miRNA-1 и miRNA-6 у больных инфарктом миокарда с подъемом сегмента ST (ИМпST), подвергшихся чрескожному коронарному вмешательству (ЧКВ). Согласно полученным данным, уровень miRNA-1 при поступлении пациента в стационар является независимым предиктором ремоделирования левого желудочка через 6 мес после ИМпST [27].

Цель исследования Coelho-Lima J. et al. состояла в том, чтобы изучить кинетику различных miRNAs после ЧКВ и их связь с обструкцией микрососудов у пациентов с ИМпST. В соответствии с полученными результатами уровни miRNA-1 и miRNA-133b через 90 мин после проведения ЧКВ были соответственно примерно в 3 (p=0,001) и 4,4 раза (p=0,008) выше у пациентов с обструкцией микрососудов по сравнению с пациентами без их обструкции [28].

Исследование Е.А. Поляковой с соавт. было посвящено изучению роли miRNA-27а, miRNA- 133а и miRNA-203 в патогенезе атеросклероза сосудов сердца. Согласно полученным результатам, экспрессия всех анализируемых miRNAs у больных с атеросклерозом коронарных артерий была значительно больше, чем у здоровых людей (группы контроля), как в кардиомиоцитах, так и сыворотке крови. Кроме того, экспрессия данных miRNAs в крови и кардиомиоцитах левого предсердия больных с поражением трех и более коронарных артерий была достоверно и значимо выше, чем у больных с поражением одного–двух сосудов [29].

Kaur A. et al. продемонстрировали, что miRNA- 21, miRNA-133 и miRNA-499, по-видимому, обладают наибольшим потенциалом в качестве биомаркеров для дифференциации острого коронарного синдрома (ОКС) от стабильной ишемической болезни сердца (ИБС) [30].

Исследование Danaii S. et al. было нацелено на изучение miRNAs у пациентов с феноменом замедления коронарного кровотока (Coronary Slow Flow Phenomenon – CSFP). Уровни экспрессии miRNA- 1, miRNA-133, miRNA-208a, miRNA- 206, miRNA-17, miRNA-29, miRNA-223, miRNA- 326 и miRNA-155 значительно увеличивались у пациентов с CSFP, при этом уровни экспрессии miRNA- 15а, miRNA-21, miRNA-25, miRNA-126, miRNA-17, miRNA-16 и miRNA-18а значительно снизились у пациентов с CSFP по сравнению с контрольной группой здоровых людей. Это исследование продемонстрировало потенциальную роль miRNAs в качестве биологических маркеров для диагностики CSFP [31].

Trotta M. et al. исследовали влияние антагониста рецепторов ангиотензина II телмисартана на ишемию/реперфузию в аспекте локальной модуляции miRNA-1. Указанный препарат уменьшал повреждение миокарда за счет модуляции miRNA- 1 и последующих модификаций коннексина-43 (Cx43), калиевых каналов KCNB1 и регулятора апоптоза Bcl-2 [32].

MIR-1 И MIR-133 ПРИ ГИПЕРТРОФИИ СЕРДЦА

Согласно данным Care A. et al., сверхэкспрессия miRNA-133 или miRNA-1 in vitro уменьшала гипертрофию сердца. Напротив, подавление miR-133 значимо индуцировало гипертрофию. В свою очередь, ингибирование miRNA-133 in vivo вызывало выраженную и устойчивую гипертрофию сердца. Исследователи идентифицировали специфические мишени miRNA-133: трансформирующий белок RhoA, гуанозиндифосфат, гуанозинтрифосфат, гомолог контроля клеточного деления 42 (Cdc42) и фактор элонгации Nelf-A [33].

MiRNA-133 ингибирует гипертрофию миокарда, непосредственно подавляя экспрессию сывороточного реактивного фактора (SRF — Serum Response Factor) [16].

По данным Ikeda et al., кальций-связывающий белок кальмодулин регулирует гипертрофию кардиомиоцитов через фактор энхансера миоцитов (MEF2a) и фосфатазный кальциневрин-ядерный фактор активированных Т-клеток (NFAT). MiRNA-1, угнетая эти факторы, уменьшает гипертрофию кардиомиоцитов [34].

Fathi M. et al. наблюдали достоверное увеличение экспрессии miRNA-1 (p=0,001), miRNA-133 (p=0,004) и экспрессии генов Srf, Hdac4 и Hand2 (все p <0,001) при физиологической гипертрофии миокарда, вызванной интенсивными физическими нагрузками [35].

В работе Koval S. et al. предметом изучения был уровень miRNA-133а в крови больных эссенциальной артериальной гипертензией (АГ). Было установлено, что у таких пациентов содержание этого биомаркера в крови было достоверно ниже, чем у практически здоровых лиц (р <0,05). Также выявлено достоверное снижение уровня miR-133a в крови у больных с гипертрофией левого желудочка (ЛЖ) по сравнению с больными без этого состояния (р <0,05), а также достоверное снижение по сравнению со здоровыми лицами контрольной группы (р <0,05) [36].

В соответствии с данными Connolly M. et al. miRNA-1 нацеливается на рецептор трансформирующего ростового фактора бета (TGF-βR1) и снижает передачу сигналов TGF-β; снижение экспрессии miRNA-1 может усиливать передачу сигналов TGF-β и способствовать гипертрофии сердца [37].

Работа А.Г. Ибрагимовой с соавт. была посвящена анализу спектра разных miRNAs при гипертрофии миокарда у больных с обструктивной формой гипертрофической кардиомиопатии (ГКМП). У пациентов этой группы в сердечной мышце наблюдалась повышенная экспрессия антигипертрофических miRNAs (miRNA-1, miRNA-133a, miRNA- 133b) по сравнению с уровнем экспрессии данных miRNAs в нормальном миокарде [38].

ЗНАЧЕНИЕ MIR-1 И MIR-133 ПРИ АРИТМИЯХ

Аномальная экспрессия miRNA-133 ингибирует калиевые каналы KCNH2 и KCNQ1 в кардиомиоцитах, что приводит к замедлению реполяризации сердца, удлинению интервала QT и возникновению аритмий [39]. MiRNA-1 подавляет калиевый канал KCNJ2 и белок альфа-1 щелевого соединения (GJA1). Это приводит к аритмиям вследствие влияния на ток калия во время реполяризации [40].

Как известно, эпоксиэйкозатриеновые кислоты (EETs) являются эндогенными биоактивными липидными медиаторами, образующимися из арахидоновой кислоты с помощью подмножества ферментов цитохрома P450 (CYP450) [4]. EETs могут метаболизироваться в дигидроксиэйкозатриеновые кислоты при помощи растворимой эпоксидгидролазы (sEH). Растворимый ингибитор эпоксидгидролазы (sEHi) повышает концентрацию EETs за счет подавления их деградации [4]. Согласно данным Gui Y. et al., Liu Q. et al., EETs играют антиаритмическую роль, снижая регуляцию аномально повышенных miRNA-1 и miRNA- 133 в миокарде после ОИМ [39, 41], но конкретный механизм этого все еще остается неясным [4]. Возможные механизмы влияния miRNA-1 и miRNA-133 на возникновение нарушений ритма сердца представлены на рисунке.

76-1.jpg (109 KB)

В работе Sun L. et al. был проведен анализ miRNAs в крови детей с желудочковой тахикардией. У исследованных больных с этой формой аритмии уровни miRNA-133 оказались значительно повышены по сравнению с контрольной группой здоровых детей (p=0,024). При этом не было отмечено достоверных различий в уровнях miRNA-1 между больными и здоровыми детьми [42].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В современном мире имеются высокие технологии для идентификации новых биологических маркеров, вследствие чего целесообразно создание мультибиомаркерной модели диагностики и прогнозирования течения кардиоваскулярной патологии. Конечно же, для этого потребуется совершенствование биоинформационных технологий, необходимых для анализа большой базы данных. Представленный литературный обзор указывает на потенциально важную диагностическую и прогностическую значимость оценки miRNA-1 и miRNA-133. Ожидается, что дальнейшие научно-клинические исследования продемонстрируют возможности их использования в качестве дополнительных лабораторных инструментов диагностики и оценки прогноза у пациентов кардиологического профиля. Регуляция концентрации данных miRNA в крови и их экспрессии в клетках сердца с помощью медикаментозных препаратов, возможно, окажется многообещающей мишенью для лечения патологии сердца и сосудов.

Список литературы

1. Аушев В.Н. МикроРНК: малые молекулы с большим значением. Клиническая онкогематология. 2015; 8(1): 1–12.

2. Алиева А.М., Теплова Н.В., Кисляков В.А. с соавт. Биомаркеры в кардиологии: микроРНК и сердечная недостаточность. Терапия. 2022; 8(1): 60–70.

3. Бейлерли О.А., Гареев И.Ф., Бейлерли А.Т. Микро-РНК как новые игроки в контроле функций гипоталамуса. Креативная хирургия и онкология. 2019; 9(2): 138–143.

4. Zhipeng S., Rui G., Bo Y. Potential roles of microRNA-1 and microRNA-133 in cardiovascular disease. Rev Cardiovasc Med. 2020; 21(1): 57–64. https://dx.doi.org/10.31083/j.rcm.2020.01.577.

5. Ouyang Z., Wei K. MiRNA in cardiac development and regeneration. Cell Regen. 2021; 10(1): 14.https://dx.doi.org/10.1186/s13619-021-00077-5.

6. Kalayinia S., Arjmand F., Maleki M. et al. MicroRNAs: Roles in cardiovascular development and disease. Cardiovasc Pathol. 2021; 50: 107296. https://dx.doi.org/10.1016/j.carpath.2020.107296.

7. Ромакина В.В., Жиров И.В., Насонова С.Н. с соавт. МикроРНК как биомаркеры сердечно-сосудистых заболеваний. Кардиология. 2018; 58(1): 66–71.

8. Ибрагимова А.Г., Шахмаева К.Р., Станишевская И.Е., Шиндяпина А.В. Потенциальная роль микроРНК при кальцинозе сосудов. Российский кардиологический журнал. 2019; 24(10): 118–125.

9. Lee G.K., Hsieh Y.P., Hsu S.W., Lan S.J. Exploring diagnostic and prognostic predictive values of microRNAs for acute myocardial infarction: A PRISMA-compliant systematic review and meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2021; 100(29): e26627.https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000026627.

10. Lee R.C., Feinbaum R.L., Ambros V. The C. elegans heterochronic gene lin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14. Cell. 1993; 75(5): 843–54. https://dx.doi.org/10.1016/0092-8674(93)90529-y.

11. Шакарьянц Г.А., Кожевникова М.В., Каплунова В.Ю. с соавт. Взгляд на гипертрофию миокарда с позиции транскриптомики и метаболомики. Кардиология. 2020; 60(4): 120–129.

12. Islas J.F., Moreno-Cuevas J.E. A microRNA perspective on cardiovascular development and diseases: An update. Int J Mol Sci. 2018; 19(7): 2075. https://dx.doi.org/10.3390/ijms19072075.

13. Shi Q., Yang X. Circulating microRNA and long noncoding RNA as biomarkers of cardiovascular diseases. J Cell Physiol. 2016; 231(4): 751–55. https://dx.doi.org/10.1002/jcp.25174.

14. Zhao Y., Ransom J.F., Li A. et al. Dysregulation of cardiogenesis, cardiac conduction, and cell cycle in mice lacking miRNA-1-2. Cell. 2007; 129(2): 303–17. https://dx.doi.org/10.1016/j.cell.2007.03.030.

15. Wu N., Gu T., Lu L. et al. Roles of miRNA-1 and miRNA-133 in the proliferation and differentiation of myoblasts in duck skeletal muscle. J Cell Physiol. 2019; 234(4): 3490–99. https://dx.doi.org/10.1002/jcp.26857.

16. Chen J.F., Mandel E.M., Thomson J.M. et al. The role of microRNA-1 and microRNA-133 in skeletal muscle proliferation and differentiation. Nat Genet. 2006; 38(2): 228–33. https://dx.doi.org/10.1038/ng1725.

17. Hagiwara S., Kantharidis P., Cooper M.E. MicroRNA as biomarkers and regulator of cardiovascular development and disease. Curr Pharm Des. 2014; 20(14): 2347–70. https://dx.doi.org/10.2174/13816128113199990495.

18. Valkov N., King M.E., Moeller J. et al. MicroRNA-1-mediated inhibition of cardiac fibroblast proliferation through targeting cyclin D2 and CDK6. Front Cardiovasc Med. 2019; 6: 65. https://dx.doi.org/10.3389/fcvm.2019.00065.

19. Zhang X.G., Wang L.Q., Guan H.L. Investigating the expression of miRNA-133 in animal models of myocardial infarction and its effect on cardiac function. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019; 23(13): 5934–40. https://dx.doi.org/10.26355/eurrev_201907_18338.

20. Werner J.H., Rosenberg J.H., Um J.Y. et al. Molecular discoveries and treatment strategies by direct reprogramming in cardiac regeneration. Transl Res. 2019; 203: 73–87. https://dx.doi.org/10.1016/j.trsl.2018.07.012.

21. Cheng M., Yang J., Zhao X. et al. Circulating myocardial microRNAs from infarcted hearts are carried in exosomes and mobilise bone marrow progenitor cells. Nat Commun. 2019; 10(1): 959. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-019-08895-7.

22. Muraoka N., Yamakawa H., Miyamoto K. et al. MiR-133 promotes cardiac reprogramming by directly repressing Snai1 and silencing fibroblast signatures. EMBO J. 2014; 33(14): 1565–81. https://dx.doi.org/10.15252/embj.201387605.

23. Nam Y.J., Song K., Luo X. et al. Reprogramming of human fibroblasts toward a cardiac fate. Proc Natl Acad Sci USA. 2013; 110(14): 5588–93. https://dx.doi.org/10.1073/pnas.1301019110.

24. Christoforou N., Chakraborty S., Kirkton R.D. et al. Core transcription factors, microRNAs, and small molecules drive transdifferentiation of human fibroblasts towards the cardiac cell lineage. Sci Rep. 2017; 7: 40285.https://dx.doi.org/10.1038/srep40285.

25. Pinchi E., Frati P., Aromatario M. et al. MiR-1, miR-499 and miR-208 are sensitive markers to diagnose sudden death due to early acute myocardial infarction. J Cell Mol Med. 2019; 23(9): 6005–16. https://dx.doi.org/10.1111/jcmm.14463.

26. Ewelina K., Eljaszewicz A., Kazimierczyk R. et al. Altered microRNA dynamics in acute coronary syndrome. Postepy Kardiol Interwencyjnej. 2020; 16(3): 287–93. https://dx.doi.org/10.5114/aic.2020.99263.

27. Ma Q., Ma Y., Wang X. et al. Circulating miR-1 as a potential predictor of left ventricular remodeling following acute ST-segment myocardial infarction using cardiac magnetic resonance. Quant Imaging Med Surg. 2020; 10(7): 1490–503.https://dx.doi.org/10.21037/qims-19-829.

28. Coelho-Lima J., Mohammed A., Cormack S. et al. Kinetics analysis of circulating microRNAs unveils markers of failed myocardial reperfusion. Clin Chem. 2020; 66(1): 247–56. https://dx.doi.org/10.1373/clinchem.2019.308353.

29. Полякова Е.А., Зарайский М.И., Беркович О.А. с соавт. Роль малых некодирующих РНК в патогенезе атеросклероза коронарных артерий. Трансляционная медицина. 2018; 5(3): 5–14.

30. Kaur A., Mackin S.T., Schlosser K. et al. Systematic review of microRNA biomarkers in acute coronary syndrome and stable coronary artery disease. Cardiovasc Res. 2020; 116(6): 1113–24. https://dx.doi.org/10.1093/cvr/cvz302.

31. Danaii S., Shiri S., Dolati S. et al. The association between inflammatory cytokines and miRNAs with slow coronary flow phenomenon. Iran J Allergy Asthma Immunol. 2020; 19(1): 56–64. https://dx.doi.org/10.18502/ijaai. v19i1.2418.

32. Trotta M.C., Ferraro B., Messina A. et al. Telmisartan cardioprotects from the ischaemic/hypoxic damage through a miR-1-dependent pathway. J Cell Mol Med. 2019; 23(10): 6635–45. https://dx.doi.org/10.1111/jcmm.14534.

33. Care A., Catalucci D., Felicetti F. et al. MicroRNA-133 controls cardiac hypertrophy. Nat Med. 2007; 13(5): 613–18.https://dx.doi.org/10.1038/nm1582.

34. Ikeda S., He A., Kong S.W. et al. MicroRNA-1 negatively regulates expression of the hypertrophy-associated calmodulin and Mef2a genes. Mol Cell Biol. 2009; 29(8): 2193–204. https://dx.doi.org/10.1128/MCB.01222-08.

35. Fathi M., Gharakhanlou R., Rezaei R. The Changes of Heart miR-1 and miR-133 Expressions following physiological hypertrophy due to endurance training. Cell J. 2020; 22(Suppl 1): 133–40. https://dx.doi.org/10.22074/cellj.2020.7014.

36. Koval S., Snihurska I., Yushko K. et al. Plasma microrna-133а level in patients with essential arterial hypertension. Georgian Med News. 2019; (290): 52–59.

37. Connolly M., Garfield B.E., Crosby A. et al. MiR-1-5p targets TGF-βR1 and is suppressed in the hypertrophying hearts of rats with pulmonary arterial hypertension. PLoS One. 2020; 15(2): e0229409. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0229409.

38. Ибрагимова А.Г., Зубко А.В., Чудиновских Ю.А. с соавт. Изучение спектра микроРНК при гипертрофии миокарда у пациентов с обструктивной формой гипертрофической кардиомиопатии. Клиническая физиология кровообращения. 2014; (1): 21–25.

39. Gui Y., Li D., Chen J. et al. Soluble epoxide hydrolase inhibitors, t-AUCB, downregulated miR-133 in a mouse model of myocardial infarction. Lipids Health Dis. 2018; 17(1): 129. https://dx.doi.org/10.1186/s12944-018-0780-y.

40. Gui Y.J., Yang T., Liu Q. et al. Soluble epoxide hydrolase inhibitors, t-AUCB, regulated microRNA-1 and its target genes in myocardial infarction mice. Oncotarget. 2017; 8(55): 94635–49. https://dx.doi.org/10.18632/oncotarget.21831.

41. Liu Q., Zhao X., Peng R. et al. Soluble epoxide hydrolase inhibitors might prevent ischemic arrhythmias via microRNA-1 repression in primary neonatal mouse ventricular myocytes. Mol Biosyst. 2017; 13(3): 556–64. https://dx.doi.org/10.1039/c6mb00824k.

42. Sun L., Sun S., Zeng S., Li Y., Pan W., Zhang Z. Expression of circulating microRNA-1 and microRNA-133 in pediatric patients with tachycardia. Mol Med Rep. 2015; 11(6): 4039–46. https://dx.doi.org/10.3892/mmr.2015.3246.

Об авторах / Для корреспонденции

Амина Магомедовна Алиева, к.м.н., доцент кафедры госпитальной терапии имени академика Г.И. Сторожакова лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: amisha_alieva@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0001-5416-8579. SPIN-код: 2749-6427
Наталья Вадимовна Теплова, д.м.н., профессор, зав. кафедрой клинической фармакологии лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет
им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1.
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-7181-4680
Алексей Владимирович Бутенко, д.м.н., профессор, главный врач Научно-клинического центра № 2 ФГБНУ «Российский научный центр хирургии им. академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России. Адрес: 117593, г. Москва, Литовский бульвар, д. 1а
Евгений Евгеньевич Аверин, д.м.н., начальник научно-образовательного центра Научно-клинического центра №2 ФГБНУ «Российский научный центр хирургии им. академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России. Адрес: 117593, г. Москва, Литовский бульвар, д. 1а. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6595-6471
Мадина Фатхуллаевна Ахмедова, к.м.н., врач-кардиолог отделения взрослой кардиохирургии клиники AKFA Medline (г. Ташкент). E-mail: drmadina@yandex.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-000206184-6742
Юлия Анатольевна Шихова, к.м.н., зам. главного врача по лечебной работе Научно-клинического центра № 2 ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского» Минобрнауки России. Адрес: 117593, г. Москва, Литовский бульвар, д. 1а. ORCID: https://orcid.org/0000-0003-4688-4385
Рамиз Камраддинович Валиев, к.м.н., зав. онкохирургическим отделением № 2 ГБУЗ «Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы». Адрес: 111123, Москва, шоссе Энтузиастов, д. 86. E-mail: radiosurgery@bk.ru.
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1613-3716. SPIN-код: 2855-2867
Мухамметсахет Нурбердиевич Сарыев, врач-онколог ГБУЗ «Московский клинический научный центр
им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы». Адрес: 111123, г. Москва, шоссе Энтузиастов, д. 86. E-mail: mishamoff@gmail.com. ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1794-9258
Ирина Александровна Котикова, студент лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997,
г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: kotikova.ia@mail.ru.
ORCID: https://orcid.org/0000-0001-5352-8499. SPIN-код: 1423-7300
Игорь Геннадиевич Никитин, д.м.н., профессор, зав. кафедрой госпитальной терапии имени академика Г.И. Сторожакова лечебного факультета ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России. Адрес: 117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1. E-mail: igor.nikitin.64@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1699-0881

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.