ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Влияние тромбоцитов на течение ревматоидного артрита и сердечно-сосудистый риск

В.И. Мазуров, Е.С. Мельников, Р.А. Башкинов

1) ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, г. Санкт-Петербург 2) СПб ГБУЗ «Клиническая ревматологическая больница № 25», г. Санкт-Петербург
Аннотация. Распространенность ревматоидного артрита (РА) в мире оценивается в 0,46%. Среди внесуставных проявлений этого заболевания особенно выделяется патология органов сердечно-сосудистой системы, которая, по данным литературы, является основной причиной смертности среди пациентов с РА, достигая 39,6%. Кроме традиционных кардиоваскулярных факторов риска, независимым предиктором сердечно-сосудистых заболеваний (ССЗ) служит хроническое системное воспаление, характерное для РА. Этот факт нашел отражение в современных шкалах расчета риска сердечно-сосудистых осложнений (ССО), включающих наличие системного воспаления (в том числе при РА). Распространенность повышения уровня тромбоцитов в крови у пациентов с РА неизвестна. Остается не до конца изученной роль тромбоцитоза в течении РА и его вклад в формирование ССЗ и увеличение риска ССО. Цель настоящего обзора – представить данные международной литературы, в которых изучалась связь тромбоцитов и повышения их уровня при РА с течением воспалительного процесса и их влияние на органы сердечно-сосудистой системы.

Ключевые слова

ревматоидный артрит
тромбоцитоз
сердечно-сосудистые заболевания
сердечно-сосудистые осложнения

ВВЕДЕНИЕ

Ревматоидный артрит (РА) – системное, хроническое иммуновоспалительное заболевание неизвестной этиологии, которое сопровождается патологией суставов и имеет различные внесуставные проявления, включая поражение органов сердечно-сосудистой системы [1, 2]. Глобальная распространенность РА оценивается в 0,46% населения всего мира (в некоторых регионах от 0,06 до 1,27%), в России же она составляет 0,61%. Заболевание может дебютировать в любом возрасте, но чаще поражает лиц трудоспособного возраста и в 2–3 раза чаще встречается у женщин, чем у мужчин [3, 4].

Согласно данным обзора 50 исследований (n=91 618 пациентов), основной причиной смерти у пациентов с РА выступали кардиоваскулярные заболевания (33 250 случаев смерти – 39,6% от общей выборки) [5]. В двух крупных метаанализах c участием более 150 000 пациентов РА был связан с повышением риска сердечно-сосудистых событий (ССС) на 48% (относительный риск (ОР) 1,48; 95% доверительный интервал (ДИ): 1,36–1,62) и на 50% более частым возникновением сердечно-сосудистых заболеваний (ССЗ) [6, 7].

Вероятность развития ССЗ у пациентов с РА в 1,5–2 раза выше, чем у лиц того же возраста и пола из общей популяции. Этот повышенный риск объясняется, кроме традиционных факторов риска, высоким системным хроническим воспалением, которое является признаком РА (рис. 1) [8].

79-1.jpg (62 KB)

Расчет факторов риска сердечно-сосудистых осложнений может способствовать их раннему выявлению и вмешательству, особенно в популяции высокого риска, такой как пациенты с РА. Однако калькуляторы, разработанные для населения в целом, включая шкалу Framingham и алгоритм SCORE, склонны к недооценке риска кардиоваскулярных осложнений у пациентов с РА [9, 10], и лишь британский QRISK2 до недавнего времени [11] включал встроенный параметр РА как фактор, влияющий на совокупную оценку риска. Для решения этой проблемы в рекомендациях рабочей группы Европейской антиревматической лиги (EULAR) по лечению РА от 2017 г. для шкалы SCORE рекомендуется использовать коэффициент умножения 1,5 в моделях прогнозирования риска сердечно-сосудистых осложнений для всех пациентов с РА без поправки на длительность заболевания и внесуставные проявления, как это было ранее [12]. Кроме того, для оценки индивидуального риска кардиоваскулярных осложнений у пациентов с РА были разработаны различные инструменты, включая расширенный рейтинг риска (ERS-RA), калькулятор трансатлантического сердечно-сосудистого риска (ATACC-RA), шкалы ASSIGN и QRISK3 [13, 14].

РОЛЬ ТРОМБОЦИТОВ В АУТОИММУННЫХ РЕАКЦИЯХ И ВОСПАЛЕНИИ ПРИ РЕВМАТОИДНОМ АРТРИТЕ

Тромбоциты снабжены кластерами дифференцировки мегакариоцитов, различными поверхностными рецепторами и гликопротеинами, элементами цитоскелета, гранулами и гладкой трубчатой ​​системой эндоплазматического ретикулума [15]. Эти разнообразные свойства вместе с повсеместным присутствием тромбоцитов делают их идеальными кандидатами на роль иммунных клеток. Многими исследователями тромбоциты рассматриваются в качестве активных регуляторов врожденного и адаптивного иммунитета [16]. Поскольку хроническое системное воспаление рассматривается как ось патогенеза аутоиммунных заболеваний и служит причиной повышенного риска ССС, исследование вклада тромбоцитов в эти взаимодействия представляется особенно важным [17, 18].

Являясь продуктом мегакариоцитопоэза, тромбоциты представляют собой ануклеарные клетки с продолжительностью жизни 8–10 дней [19]. В течение этого относительно короткого периода, особенно в первые 24 ч, они могут синтезировать белки на своей мРНК и производить микрочастицы [20]. Известно также, что тромбоциты вырабатывают большое количество трансформирующего фактора роста бета (ТФР-β), который подавляет чрезмерную активацию тромбоцитов и разрушение соединительной ткани, но может и не оказывать своего благотворного действия при РА в силу нескольких причин, наиболее вероятные из которых – полиморфизмы в некоторых генах [21, 22].

Помимо участия в гемостазе, активация тромбоцитов приводит к высвобождению различных цитокинов и хемокинов, которые обеспечивают привлечение лейкоцитов и их адгезию к поврежденному эндотелию. Интерлейкин-1β (ИЛ-1β), полученный из тромбоцитов, синтезируется при активации эндотелиальных клеток. Инкубация этих клеток в присутствии тромбин-активированных тромбоцитов индуцирует зависимую от ИЛ-1β секрецию ИЛ-6, ИЛ-8, CCL-2 (моноцитарного хемотаксического фактора-1 – MCH-1) и увеличивает экспрессию молекул адгезии ICAM-1 и α v β 3 за счет эндотелиальных клеток [23, 24]. Кроме того, происходящий из тромбоцитов ИЛ-1β инициирует активацию NF-κB в эндотелиоцитах и тем самым индуцирует NF-κB-зависимую транскрипцию гена хемокинов [25].

CD40L (CD154) является секретируемой молекулой, заслуживающей особого внимания в контексте аутоиммунитета. Этот мембранный гликопротеин относится к членам семейства фактора некроза опухолей-альфа (ФНО-α) и экспрессируется активированными тромбоцитами [26]. В течение короткого периода, длящегося от нескольких минут до нескольких часов, поверхностно экспрессируемый CD40L расщепляется и высвобождается в растворимой форме (sCD40L). Считается, что более 95% sCD40L имеет тромбоцитарное происхождение и действует как триггер для активации эндотелия, увеличивая экспрессию рецепторов воспалительной адгезии (VCAM-1 и ICAM-1), вызывая выработку хемокинов (CCL-2, ИЛ-6 и ИЛ-8) и стимулирование выработки матриксной металлопротеиназы-9 (ММП-9) [15, 27]. Связывание sCD40L с CD40 на эндотелиальных клетках вызывает высвобождение медиаторов, привлекающих лейкоциты [28]. sCD40L участвует в регуляции функции Т-клеток, активации дендритных клеток и регуляции Т-зависимого переключения изотипа антител; он также обеспечивает новый механизм аутоактивации тромбоцитов и образования гомотипических агрегатов тромбоцитов [29]. Более того, sCD40L служит прогностическим биомаркером ССС, таких как острый инфаркт миокарда (ОИМ) и острое нарушение мозгового кровообращения (ОНМК), а его уровень у пациентов с РА коррелирует с уровнями ревматоидного фактора (РФ) IgM и IgG [29].

Существует большое количество хемокинов и цитокинов, выделяемых из альфа-гранул тромбоцитов, которые учувствуют в формировании и поддержании воспаления [30] (табл.).

81-1.jpg (584 KB)

Повышение количества и активности тромбоцитов у пациентов с РА может приводить к снижению их продолжительности жизни, тем самым способствуя более быстрому обновлению пула клеток c преобладанием молодых тромбоцитов, которые отличаются увеличенными размерами и повышенной реактивностью [32]. Повышенное количество растворимых рилизатов тромбоцитов, таких как Р-селектин, бета-тромбоглобулин или тромбоцитарный фактор роста 4, обнаруживается в сыворотке пациентов с РА наряду с большим количеством циркулирующих PMP (микрочастиц тромбоцитов) [33]. Повышенная активация тромбоцитов, оцениваемая по этим показателям, положительно коррелирует с тяжестью течения РА [34, 35].

Известно, что антитела к циклическому цитруллинированному пептиду (АЦЦП) и РФ могут активировать тромбоциты. Иммунные комплексы АЦЦП-IgE стимулируют тромбоциты через FccRIIA и FceRIa – рецепторы с высоким и низким сродством (FceRII/CD23) для IgE и рецептор низкоаффинного IgG (FcγRIIa) [36]. Процент АЦЦП к общему IgG показывает положительную корреляцию с активацией тромбоцитов и активностью РА [37]. Наличие этих антител [38, 39] было предложено как новый фактор риска ССС [40, 41] и нестабильности атеросклеротических бляшек [42, 43].

У пациентов с РА тромбоциты связываются с экспонированным коллагеном через мембранный рецептор гликопротеина VI (GPVI), и это взаимодействие провоцирует генерацию PMP и ИЛ-1. Повышенное количество PMP обнаруживается не только в плазме, но и синовиальной жидкости. Фактически концентрация PMP в синовиальной жидкости значительно выше, чем в крови; это позволяет предположить, что его избыточное образование происходит локально [44].

ИЛ-1 служит ключевой молекулой для взаимодействия между тромбоцитами и фибробластоподобными синовиоцитами (ФС) [45]. Активированные ФС считаются ключевыми эффекторами разрушения хряща [46] и дефектного ангиогенеза при РА [47]. По сравнению со здоровыми лицами, ФС пациентов с РА экспрессируют измененные уровни цитокинов, хемокинов, молекул адгезии и ММП, которые устойчивы к апоптозу. Их взаимодействие с тромбоцитами приводит к повышению продукции простагландина I2 (ПГ I2). PMP стимулируют повышенный синтез эйкозаноидов – циклооксигеназы 2-го типа (ЦОГ-2), микросомального простагландина Е-синтазы 1 (mPGES-1) и ПГ E2 [48].

PMP экспрессируют антигены тромбоцитов и связываются с другими аутоантигенами, присутствующими в плазме [49]. Антигены, происходящие из тромбоцитов, включают внутриклеточные белки, такие как виментин. Экстернализация виментина происходит во время активации тромбоцитов. Поверхность PMP может быть местом дальнейших посттранскрипционных модификаций аутоантигенов, например цитруллинизации [50]. Это приводит к образованию неоэпитопов, распознаваемых аутоантителами, характерными для РА [51]. Компоненты комплемента (C1q, C3 и C4) также могут связываться с поверхностью PMP и обнаруживаться в синовиальной жидкости пациентов с РА. Было показано, что эти иммунные комплексы активируют нейтрофилы, в результате чего самоподдерживающаяся активация тромбоцитов и нейтрофилов в месте синовита может участвовать в образовании цитруллинированного фибриногена и неоэпитопов виментина [50]. Белки тромбоцитарного происхождения трансформируются пептидиларгининдезиминазой 4 (PAD4) – ферментом, полученным из нейтрофилов [52]. Активация тромбоцитов и нейтрофилов вызывает нетоз, который, в свою очередь, активирует ФС, способные интернализировать нейтрофильные внеклеточные ловушки. Также происходит индуцирование свойств антигенпрезентирующих клеток в ФС, которые могут представлять полученные из тромбоцитов, посттранскрипционно модифицированные аутоантигены [53, 54].

Наконец, тромбоциты способствуют развитию синовита при РА, поддерживая постоянную проницаемость синовиального микроциркуляторного русла. Они активируют эндотелиальные клетки, что влечет за собой экспрессию молекул поверхностной адгезии и способствует миграции клеток [55]. Тромбоциты выделяют серотонин в местах повреждения сосудов, способствуя образованию эндотелиальных щелей субмикронного размера и синовиальной инфильтрации воспалительными клетками [56].

ВЛИЯНИЕ ТРОМБОЦИТОВ НА СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТУЮ ПАТОЛОГИЮ У ПАЦИЕНТОВ С РЕВМАТОИДНЫМ АРТРИТОМ

Некоторые исследования показали повышение количества тромбоцитов и тромбоцитарных факторов роста в синовии и синовиальной жидкости, ассоциированное с увеличением РФ [57]. При РА активированные тромбоциты, отдельно или вместе с другими воспалительными медиаторами, могут играть важную роль в тромбообразовании, нарушении синовиальной микроциркуляции и разрушении хряща. Тромбоциты взаимодействуют с эндотелиальными клетками и лейкоцитами в синовиальных сосудах при воспалении. Последующая агрегация тромбоцитов приводит к образованию тромбов и изменению синовиальной микроциркуляции [58]. P-селектин – молекула адгезии, вырабатываемая тромбоцитами и эндотелиальными клетками, способствует взаимодействию тромбоцитов, лейкоцитов и эндотелиальных клеток при воспалении [59]. Другие белки, продуцируемые тромбоцитами, также проявляют провоспалительное действие, которое может приводить к повреждению суставов. Так, тромбоцитарный фактор роста вызывает синовит и паннусоподобную гиперплазию в экспериментальной модели РА [60].

Повышенный уровень среднего объема тромбоцитов (MPV) связан с высоким сердечно-сосудистым риском у пациентов с артериальной гипертензией, ожирением, сахарным диабетом 2-го типа, курением и гиперхолестеринемией, а также с таким ССС, как дестабилизация атеросклеротической бляшки, нестабильная стенокардия, ОИМ и пароксизмальная форма фибрилляции предсердий [61–63]. MPV рассматривается как независимый фактор риска и предиктор ОИМ у лиц с высоким кардиоваскулярным риском [64, 65]. В большой проспективной когорте пациентов с установленным цереброваскулярным заболеванием (n=3134) увеличенный уровень MPV выступал предиктором ОНМК в течение 4 лет наблюдения. При этом увеличение MPV на каждый фемтолитр ассоциировалось с возрастанием ОР ОНМК на 11% [66]. В другом исследовании было выявлено значительное увеличение уровня MPV у пациентов с семейной средиземноморской лихорадкой, что указывает на связь между воспалением, активацией тромбоцитов и протромботическим состоянием [67].

Тем не менее были и попытки связать один маркер функции тромбоцитов (например, Р-селектин, MPV) с ускоренным атеросклерозом и ССЗ при РА, но они не увенчались успехом [68].

Относительно простой тест – агрегатометрия, являющаяся «золотым стандартом» для определения функции тромбоцитов. Она может быть выполнена с использованием обогащенной тромбоцитами плазмы или цельной крови и различных агонистов тромбоцитов (например, кислоты, аденозиндифосфата, коллагена, тромбина, эпинефрина и модифицированных иммуноглобулинов). Агонист добавляется в суспензию, после чего регистрируется динамический показатель агрегации тромбоцитов. Будучи тестом in vitro, агрегатометрия имеет ограничения (например, отсутствие взаимодействия с другими клетками крови, артефакты, возникающие во время забора образцов, центрифугирования и разделения тромбоцитов). Агрегатометрия на основе подсчета количества тромбоцитов в цельной крови преодолевает некоторые из этих ограничений. Некоторые исследования доказали, что агрегатометрия тромбоцитов полезна для выявления гиперактивности тромбоцитов при РА [69] и оценки эффективности противоревматических препаратов [70, 71]. Исследования агрегатометрии тромбоцитов выявили триггеры чрезмерной агрегации тромбоцитов: это серопозитивность по РФ, наличие антител к бета-2-микроглобулинам и циркулирующие иммунные комплексы [72, 73]. Интересно, что повышенная чувствительность тромбоцитов in vitro к агонистам и аутоиммунным факторам была обнаружена и при других ревматических заболеваниях (например, при ревматической полимиалгии, системном склерозе, подагре), где общие механизмы образования иммунных комплексов и ускоренного атерогенеза могут быть подавлены препаратами с антиагрегантам эффектом. Тромбоцитоз (>400×109/л), характерный для активного РА, был ассоциирован с повышенной чувствительностью к агонистам тромбоцитов, таким как коллаген и эпинефрин, что позволяет предположить наличие патологической связи между тромбоцитозом, тромбоцитами [74] и каскадом арахидоновой кислоты [75].

ОСОБЕННОСТИ ТРОМБОЦИТОПОЭЗА У ПАЦИЕНТОВ С РЕВМАТОИДНЫМ АРТРИТОМ

Распространенность тромбоцитоза при РА неизвестна, однако уровень тромбоцитов и их параметры могут коррелировать с активностью заболевания, а также вносить свой вклад в развитие ССЗ. В одном из исследований в Саудовской Аравии, в которое вошли 140 пациентов с РА, встречаемость тромбоцитоза составила 16% [76]. Точный патогенетический механизм, вызывающий увеличение количества тромбоцитов при РА, до сих пор не до конца понятен [77]. В литературе имеются данные о том, что провоспалительные плейотропные цитокины, участвующие в патогенезе РА, обладают мегакариоцитопоэтическими и/или тромбопоэтическими свойствами. Более того, несколько гемопоэтических цитокинов с доминантным клонированием могут также действовать как реагенты острой фазы и способствовать развитию воспаления [77]. Факторы роста, способствующие развитию и поддержанию воспаления при РА, а именно ИЛ-1, ИЛ-3, ИЛ-4, ИЛ-6, ИЛ-11, ФНО-α, фактор стволовых клеток, фактор ингибирования лейкемии, гранулоцитарный колониестимулирующий фактор, тромбопоэтин (ТПО) и эритропоэтин (ЭПО), принимают участие в мегакариоцитопоэзе во время активного воспалительного процесса. Некоторые данные указывают, что ТПО может способствовать реактивному тромбоцитозу при РА. В семействе цитокинов gp130, не являющихся клон-специфическими, ИЛ-6, по-видимому, преобладает в индукции мегакариопоэза. Однако другие цитокины и факторы роста также могут вносить вклад в патологический мегакариоцитопоэз при РА (рис. 2) [78].

83-1.jpg (69 KB)

В исследовании Kiraz S. et al. пациенты с РА и нормальным уровнем тромбоцитов имели значения ТПО, сравнимые с группой контроля. Концентрации ТПО у пациентов с легким тромбоцитозом (450–650×109/л) были значительно повышены, тогда как у пациентов с уровнем тромбоцитов тромбоцитов более 650×109 снижены. Таким образом, уровень ТПО может быть связан с реактивным тромбоцитозом у пациентов с РА высокой активности [79].

РОЛЬ ТРОМБОЦИТОЗА В ТЕЧЕНИИ РЕВМАТОИДНОГО АРТРИТА

В исследовании Hutchinson R. et al. было продемонстрировано, что у пациентов с РА наблюдается взаимосвязь между количеством тромбоцитов и активностью заболевания. Также было отмечено, что повышение уровня тромбоцитов коррелировало с тяжестью анемии, сидеропенией, лейкоцитозом и уровнем РФ по сравнению с больными РА, имевшими нормотромбоцитемию (p <0,001). Более того, у пациентов с тромбоцитозом системные проявления РА (поражения легких, ревматоидные узелки, кожный васкулит) встречались чаще, однако данная связь не была значимой (p >0,05) [80].

Схожие данные были получены в исследовании Schmitt-Sody M. et al., где была выявлена корреляция между уровнем тромбоцитов и активностью РА, лейкоцитозом, повышенным уровнем РФ, а также скоростью оседания эритроцитов (СОЭ). Кроме того, была дана оценка положительному влиянию растворимого Р-селектина на адгезию лейкоцитов к эндотелиоцитам [58].

В другом исследовании, выполненном Ertenli I. et al., было установлено, что пациенты с РА и тромбоцитозом, по сравнению с пациентами без повышения тромбоцитов, имели более высокую активность заболевания, повышенные уровни СОЭ и С-реактивного белка (СРБ), растворимого Р-селектина и большую продолжительность утренней скованности [81]. Farr M. et al., кроме взаимосвязи тромбоцитоза с клинико-лабораторной активностью, обнаружили снижение продолжительности жизни тромбоцитов у пациентов с РА высокой активности и гипертромбоцитозом при сохранении нормальной агрегационной способности тромбоцитов [82].

Несколько коллективов авторов в серии описания случаев показали, что результатом тромбоцитоза, высокой адгезии и агрегации тромбоцитов могут быть рецидивирующие тромбоэмболии различной локализации. При этом риск развития гиперкоагуляции и тромбоэмолических осложнений во всех случаях напрямую зависел от активности течения РА [83–85]. При анализе цитокинового спектра у пациентов с РА и гипертромбоцитозом было выявлено повышение уровней ИЛ-1β, ИЛ-4 и ИЛ-6, тогда как у больных с нормальным или сниженным уровнем тромбоцитов концентрация этих цитокинов не возрастала [77, 86]. При оценке влияния уровня тромбоцитов на поражение суставов Kacena M. et al. установили, что пациенты с тромбоцитозом имели более высокую рентгенологическую стадию поражения суставов за одинаковый период болезни. Несмотря на участие мегакариоцитов в регуляции процессов синтеза костной ткани, провоспалительные цитокины, по всей видимости, подавляют эту активность, усиливая, в свою очередь, остеокластогенез и приводя к формированию эрозий [87].

ВЛИЯНИЕ ТРОМБОЦИТАРНЫХ ИНДЕКСОВ НА АКТИВНОСТЬ РЕВМАТОИДНОГО АРТРИТА

Различные авторы изучали связь между активностью РА и уровнями гемоглобина, количеством тромбоцитов и MPV. В исследовании Talukdar M. et al. были оценены все эти параметры и их влияние на активность РА у 80 пациентов, из которых 48 пациентов имели высокую (DAS28 >5,1) и 32 – умеренную или низкую (DAS 28 <5,1) степени активности заболевания. Пациенты с высокой активностью имели значительно более высокий уровень тромбоцитов и MPV, но более низкий уровень гемоглобина, чем пациенты со средней и низкой активностью, как среди мужчин, так и женщин (р <0,001) [88]. Этот результат согласуется с выводами, сделанными в предыдущих исследованиях, проведенных Milovanovic M. et al. [86], Yazici S. et al. [89], где так же были выявлены положительные взаимосвязи между уровнем MPV и активностью РА. В то же время в исследовании Moghimi J. et al. не было обнаружено существенной разницы между уровнями MPV у пациентов с различной активностью РА [90]. Напротив, Kisacik B. et al. [91] и Gasparyan A. et al. [92] продемонстрировали снижение MPV у пациентов с активным РА.

Khaled S. et al. была предложена модель оценки активности РА при помощи показателей тромбоцитов [93]. Основную группу этого исследования составили 98 пациентов с РА; в группу контроля вошли 53 человека без РА, которые были сопоставимы с основной по возрасту и полу. В качестве исследуемых параметров были выбраны СОЭ, СРБ, индексы тромбоцитов из общего анализа крови (количество тромбоцитов (PLT), MPV, ширина распределения тромбоцитов (PDW) и тромбокрит (PCT). Ввиду того что MPV, PDW, СРБ и СОЭ были выше у пациентов с РА, на основе этих параметров был разработан новый индекс, получивший название New DAS: EgyDAS = 5,78 + 0,65 × ln(СОЭ) + 0,37 × ln(СРБ) – 7,47/√PDW – 3,09 × ln(MPV). Этот индекс коррелировал с DAS28. Кроме того, новая шкала продемонстрировала возможности идентификации пациентов с РА (пороговое значение <-0,79) и их стратификации в соответствии с активностью заболевания (низкая, средняя, высокая или ремиссия) [93].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В настоящее время не вызывает сомнений тот факт, что пациенты с иммуновоспалительными заболеваниями, включая РА, имеют повышенные риски развития ССЗ. При этом известные механизмы и доказанные факторы риска ССЗ не полностью объясняют повышенную сердечно-сосудистую смертность у данной когорты пациентов. Имеющиеся данные свидетельствуют о том, что тромбоциты могут выступать факторами прогрессирования ССЗ, участвуют в воспалении, дисфункции эндотелия, тромбоза и являются потенциальными мишенями для противоревматоидной и сердечно-сосудистой терапии при РА.

Системное воспаление, опосредованное многочисленными цитокинами (ФНО-α, ИЛ-6, ИЛ-8), факторами роста и аутоантителами, стимулирует оборот тромбоцитов в костном мозге при РА. Тромбоциты могут превосходить лейкоциты, моноциты и другие клетки в производстве Р-селектина, CD40L, тромбоцитарного фактора роста и таким образом занимать одну из лидирующих позиций в процессе системного воспаления. Тромбоциты, тромбоцитарный фактор 4, тромбоцитарные факторы роста, серотонин и микрочастицы были обнаружены в синовиальной жидкости пациентов с РА; там эти агенты могут нарушать микроциркуляцию и поддерживать воспаление. Однако весьма вероятно, что циркулирующие тромбоциты, включая те, что происходят из синовиальной жидкости, обладают более важной васкулопатической функцией. Поэтому важно дальнейшее изучение количества, функции, роли тромбоцитов и тромбоцитопоэза у пациентов с РА различной активности и их динамики на фоне применения базисной и генно-инженерной биологической терапии.

Список литературы

  1. Мазуров В.И., Гайдукова И.З., Беляева И.Б. Клиническая ревматология. 3-е издание, переработанное и дополненное. Руководство для врачей. Под ред. В.И. Мазурова. М.: Е-ното. 2021; 696 с.
  2. Smolen J.S., Aletaha D., McInnes I.B. Rheumatoid arthritis. Lancet. 2016; 388(10055): 2023–38. doi: 10.1016/S0140-6736(16)30173-8.
  3. Галушко Е.А., Насонов Е.Л. Распространенность ревматических заболеваний в России. Альманах клинической медицины. 2018; 1: 32–39.
  4. Almutairi K., Nossent J., Preen D. et al. 749. The global prevalence of Rheumatoid Arthritis: A meta-analysis. Int J Epidemiol. 2021; 50(1): September dyab168.034. doi: 10.1093/ije/dyab168.034.
  5. Sokka T., Abelson B., Pincus T. Mortality in rheumatoid arthritis: 2008 update. Clin Exp Rheumatol. 2008; 26(5 Suppl 51): S35–S61.
  6. Avina-Zubieta J.A., Thomas J., Sadatsafavi M. et al. Risk of incident cardiovascular events in patients with rheumatoid arthritis: a meta-analysis of observational studies. Ann Rheum Dis. 2012; 71(9): 1524–29. doi: 10.1136/annrheumdis-2011-200726.
  7. Avina-Zubieta J.A., Choi H.K., Sadatsafavi M. et al. Risk of cardiovascular mortality in patients with rheumatoid arthritis: a meta-analysis of observational studies. Arthritis Rheum. 2008; 59(12): 1690–97. doi: 10.1002/art.24092.
  8. Hansildaar R., Vedder D., Baniaamam M. et al. Cardiovascular risk in inflammatory arthritis: rheumatoid arthritis and gout. Lancet Rheumatol. 2021; 3(1): e58–e70. doi: 10.1016/S2665-9913(20)30221-6.
  9. Arts E.E., Popa C., Den Broeder A.A. et al. Performance of four current risk algorithms in predicting cardiovascular events in patients with early rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 2015; 74(4): 668–74. doi: 10.1136/annrheumdis-2013-204024.
  10. Crowson C.S., Matteson E.L., Roger V.L. et al. Usefulness of risk scores to estimate the risk of cardiovascular disease in patients with rheumatoid arthritis. Am J Cardiol. 2012; 110(3): 420–24. doi: 10.1016/j.amjcard.2012.03.044.
  11. Hippisley-Cox J., Coupland C., Vinogradova Y. et al. Predicting cardiovascular risk in England and Wales: Prospective derivation and validation of QRISK2. BMJ. 2008; 336(7659): 1475–82. doi: 10.1136/bmj.39609.449676.25.
  12. Agca R., Heslinga S.C., Rollefstad S. et al. EULAR recommendations for cardiovascular disease risk management in patients with rheumatoid arthritis and other forms of inflammatory joint disorders: 2015/2016 update. Ann Rheum Dis. 2017; 76(1): 17–28. doi: 10.1136/annrheumdis-2016-209775.
  13. Arts E.E., Popa C.D., Den Broeder A.A. et al. Prediction of cardiovascular risk in rheumatoid arthritis: performance of original and adapted SCORE algorithms. Ann Rheum Dis. 2016; 75(4): 674–80. doi: 10.1136/annrheumdis-2014-206879.
  14. Solomon D.H., Greenberg J., Curtis J.R. et al. Derivation and internal validation of an expanded cardiovascular risk prediction score for rheumatoid arthritis: a Consortium of Rheumatology Researchers of North America Registry Study
  15. Machlus K.R., Thon J.N., Italiano J.E. Jr. Interpreting the developmental dance of the megakaryocyte: a review of the cellular and molecular processes mediating platelet formation. Br J Haematol. 2014; 165(2): 227–36. doi: 10.1111/bjh.12758.
  16. Garraud O., Cognasse F. Are Platelets Cells? And if yes, are they immune cells? Front Immunol. 2015; 6: 70. doi: 10.3389/fimmu.2015.00070.
  17. Amaya-Amaya J., Montoya-Sanchez L., Rojas-Villarraga A. Cardiovascular involvement in autoimmune diseases. Biomed Res Int. 2014; 2014: 367359. doi: 10.1155/2014/367359.
  18. Golebiewska E.M., Poole A.W. Platelet secretion: From haemostasis to wound healing and beyond. Blood Rev. 2015; 29(3): 153–62. doi: 10.1016/j.blre.2014.10.003.
  19. Kaushansky K. The molecular mechanisms that control thrombopoiesis. J Clin Invest. 2005; 115(12): 3339–47. doi: 10.1172/JCI26674.
  20. Harrison P., Goodall A.H. «Message in the platelet» – more than just vestigial mRNA! Platelets. 2008; 19(6): 395–404. doi: 10.1080/09537100801990582.
  21. Jackson M., Ahmad Y., Bruce I.N. et al. Activation of transforming growth factor-beta1 and early atherosclerosis in systemic lupus erythematosus. Arthritis Res Ther. 2006; 8(3): R81. doi: 10.1186/ar1951.
  22. Weicht B., Maitz P., Kandler B. et al. Activated platelets positively regulate RANKL-mediated osteoclast differentiation. J Cell Biochem. 2007; 102(5): 1300–07. doi: 10.1002/jcb.21360.
  23. Gawaz M., Brand K., Dickfeld T. et al. Platelets induce alterations of chemotactic and adhesive properties of endothelial cells mediated through an interleukin-1-dependent mechanism. Implications for atherogenesis. Atherosclerosis. 2000; 148(1): 75–85. doi: 10.1016/s0021-9150(99)00241-5.
  24. Kaplanski G., Farnarier C., Kaplanski S. et al. Interleukin-1 induces interleukin-8 secretion from endothelial cells by a juxtacrine mechanism. Blood. 1994; 84(12): 4242–48.
  25. Langer H.F., Gawaz M. Platelet-vessel wall interactions in atherosclerotic disease. Thromb Haemost. 2008; 99(3): 480–86. doi: 10.1160/TH07-11-0685.
  26. Elzey B.D., Sprague D.L., Ratliff T.L. The emerging role of platelets in adaptive immunity. Cell Immunol. 2005; 238(1): 1–9. doi: 10.1016/j.cellimm.2005.12.005.
  27. Blair P., Flaumenhaft R. Platelet alpha-granules: basic biology and clinical correlates. Blood Rev. 2009; 23(4): 177–89. doi: 10.1016/j.blre.2009.04.001.
  28. Sprague D.L., Elzey B.D., Crist S.A. et al. Platelet-mediated modulation of adaptive immunity: unique delivery of CD154 signal by platelet-derived membrane vesicles. Blood. 2008; 111(10): 5028–36. doi: 10.1182/blood-2007-06-097410.
  29. Inwald D.P., McDowall A., Peters M.J. et al. CD40 is constitutively expressed on platelets and provides a novel mechanism for platelet activation. Circ Res. 2003; 92(9): 1041–48. doi: 10.1161/01.RES.0000070111.98158.6C.
  30. Rendu F., Brohard-Bohn B. The platelet release reaction: granules’ constituents, secretion and functions. Platelets. 2001; 12(5): 261–73. doi: 10.1080/09537100120068170.
  31. Łukasik Z.M., Makowski M., Makowska J.S. From blood coagulation to innate and adaptive immunity: the role of platelets in the physiology and pathology of autoimmune disorders. Rheumatol Int. 2018; 38(6): 959–74. doi: 10.1007/s00296-018-4001-9.
  32. Habets K.L., Huizinga T.W., Toes R.E. Platelets and autoimmunity. Eur J Clin Invest. 2013; 43(7): 746–57. doi: 10.1111/eci.12101.
  33. Kehrel B.E., Brodde M.F. State of the art in platelet function testing. Transfus Med Hemother. 2013; 40(2): 73–86. doi: 10.1159/000350469.
  34. Lood C., Tyden H., Gullstrand B. et al. Platelet activation and anti-phospholipid antibodies collaborate in the activation of the complement system on platelets in systemic lupus erythematosus. PLoS One. 2014; 9(6): e99386. doi: 10.1371/journal.pone.0099386.
  35. Gasparyan A.Y., Stavropoulos-Kalinoglou A., Mikhailidis D.P. et al. Platelet function in rheumatoid arthritis: Arthritic and cardiovascular implications. Rheumatol Int. 2011; 31(2): 153–64. doi: 10.1007/s00296-010-1446-x.
  36. Arman M., Krauel K. Human platelet IgG Fc receptor FcγRIIA in immunity and thrombosis. J Thromb Haemost. 2015; 13(6): 893–908. doi: 10.1111/jth.12905.
  37. Habets K.L., Trouw L.A., Levarht E.W. et al. Anti-citrullinated protein antibodies contribute to platelet activation in rheumatoid arthritis. Arthritis Res Ther. 2015; 17(1): 209. doi: 10.1186/s13075-015-0665-7.
  38. Sokolove J., Brennan M.J., Sharpe O. et al. Brief report: Citrullination within the atherosclerotic plaque: a potential target for the anti-citrullinated protein antibody response in rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum. 2013; 65(7): 1719–24. doi: 10.1002/art.37961.
  39. Weyrich A.S., Zimmerman G.A. Platelets: Signaling cells in the immune continuum. Trends Immunol. 2004; 25(9): 489–95. doi: 10.1016/j.it.2004.07.003.
  40. Vazquez-Del Mercado M., Nunez-Atahualpa L., Figueroa-Sanchez M. et al. Serum levels of anticyclic citrullinated peptide antibodies, interleukin-6, tumor necrosis factor-α, and C-reactive protein are associated with increased carotid intima-media thickness: a cross-sectional analysis of a cohort of rheumatoid arthritis patients without cardiovascular risk factors. Biomed Res Int. 2015; 2015: 342649. doi: 10.1155/2015/342649.
  41. Verschoor A., Langer H.F. Crosstalk between platelets and the complement system in immune protection and disease. Thromb Haemost. 2013; 110(5): 910–19. doi: 10.1160/TH13-02-0102.
  42. Gerli R., Bartoloni Bocci E., Sherer Y. et al. Association of anti-cyclic citrullinated peptide antibodies with subclinical atherosclerosis in patients with rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 2008; 67(5): 724–25. doi: 10.1136/ard.2007.073718.
  43. Barbarroja N., Perez-Sanchez C., Ruiz-Limon P. et al. Anticyclic citrullinated protein antibodies are implicated in the development of cardiovascular disease in rheumatoid arthritis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014; 34(12): 2706–16. doi: 10.1161/ATVBAHA.114.304475.
  44. Boilard E., Nigrovic P.A., Larabee K. et al. Platelets amplify inflammation in arthritis via collagen-dependent microparticle production. Science. 2010; 327(5965): 580–83. doi: 10.1126/science.1181928.
  45. Kojima F., Naraba H., Sasaki Y. et al. Prostaglandin E2 is an enhancer of interleukin-1beta-induced expression of membrane-associated prostaglandin E synthase in rheumatoid synovial fibroblasts. Arthritis Rheum. 2003; 48(10): 2819–28. doi: 10.1002/art.11261.
  46. Bartok B., Firestein G.S. Fibroblast-like synoviocytes: key effector cells in rheumatoid arthritis. Immunol Rev. 2010; 233(1): 233–55. doi: 10.1111/j.0105-2896.2009.00859.x.
  47. Reich N., Beyer C., Gelse K. et al. Microparticles stimulate angiogenesis by inducing ELR(+) CXC-chemokines in synovial fibroblasts. J Cell Mol Med. 2011; 15(4): 756–62. doi: 10.1111/j.1582-4934.2010.01051.x.
  48. Jungel A., Distler O., Schulze-Horsel U. et al. Microparticles stimulate the synthesis of prostaglandin E(2) via induction of cyclooxygenase 2 and microsomal prostaglandin E synthase 1. Arthritis Rheum. 2007; 56(11): 3564–74. doi: 10.1002/art.22980.
  49. Cloutier N., Tan S., Boudreau L.H. et al. The exposure of autoantigens by microparticles underlies the formation of potent inflammatory components: the microparticle-associated immune complexes. EMBO Mol Med. 2013; 5(2): 235–49. doi: 10.1002/emmm.201201846.
  50. Lundberg K., Nijenhuis S., Vossenaar E.R. et al. Citrullinated proteins have increased immunogenicity and arthritogenicity and their presence in arthritic joints correlates with disease severity. Arthritis Res Ther. 2005; 7(3): R458–R467. doi: 10.1186/ar1697.
  51. Burska A.N., Hunt L., Boissinot M. et al. Autoantibodies to posttranslational modifications in rheumatoid arthritis. Mediators Inflamm. 2014; 2014: 492873. doi: 10.1155/2014/492873.
  52. Maugeri N., Rovere-Querini P., Manfredi A.A. Disruption of a regulatory network consisting of neutrophils and platelets fosters persisting inflammation in rheumatic diseases. Front Immunol. 2016; 7: 182. doi: 10.3389/fimmu.2016.00182.
  53. Khandpur R., Carmona-Rivera C., Vivekanandan-Giri A. et al. NETs are a source of citrullinated autoantigens and stimulate inflammatory responses in rheumatoid arthritis. Sci Transl Med. 2013; 5(178): 178ra40. doi: 10.1126/scitranslmed.3005580.
  54. Peerschke E.I., Yin W., Ghebrehiwet B. Complement activation on platelets: implications for vascular inflammation and thrombosis. Mol Immunol. 2010; 47(13): 2170–75. doi: 10.1016/j.molimm.2010.05.009.
  55. Gros A., Ollivier V., Ho-Tin-Noe B. Platelets in inflammation: regulation of leukocyte activities and vascular repair. Front Immunol. 2015; 5: 678. doi: 10.3389/fimmu.2014.00678.
  56. Mauler M., Bode C., Duerschmied D. Platelet serotonin modulates immune functions. Hamostaseologie. 2016; 36(1): 11–16. doi: 10.5482/HAMO-14-11-0073.
  57. Palmer D.G., Hogg N., Revell P.A. Lymphocytes, polymorphonuclear leukocytes, macrophages and platelets in synovium involved by rheumatoid arthritis. A study with monoclonal antibodies. Pathology. 1986; 18(4): 431–37. doi: 10.3109/00313028609087564.
  58. Schmitt-Sody M., Metz P., Gottschalk O. et al. Platelet P-selectin is significantly involved in leukocyte-endothelial cell interaction in murine antigen-induced arthritis. Platelets. 2007; 18(5): 365–72. doi: 10.1080/09537100701191315.
  59. Schmitt-Sody M., Metz P., Klose A. et al. In vivo interactions of platelets and leucocytes with the endothelium in murine antigen-induced arthritis: the role of P-selectin. Scand J Rheumatol. 2007; 36(4): 311–19. doi: 10.1080/03009740701218741.
  60. Waguri-Nagaya Y., Otsuka T., Sugimura I. et al. Synovial inflammation and hyperplasia induced by gliostatin/platelet-derived endothelial cell growth factor in rabbit knees. Rheumatol Int. 2000; 20(1): 13–19. doi: 10.1007/s002960000067.
  61. Avramakis G., Papadimitraki E., Papakonstandinou D. et al. Platelets and white blood cell subpopulations among patients with myocardial infarction and unstable angina. Platelets. 2007; 18(1): 16–23. doi: 10.1080/09537100600800412.
  62. Muscari A., De Pascalis S., Cenni A. et al. Determinants of mean platelet volume (MPV) in an elderly population: relevance of body fat, blood glucose and ischaemic electrocardiographic changes. Thromb Haemost. 2008; 99(6): 1079–84. doi: 10.1160/TH07-12-0712.
  63. Colkesen Y., Acil T., Abayli B. et al. Mean platelet volume is elevated during paroxysmal atrial fibrillation: a marker of increased platelet activation? Blood Coagul Fibrinolysis. 2008; 19(5): 411–14. doi: 10.1097/MBC.0b013e3283049697.
  64. Endler G., Klimesch A., Sunder-Plassmann H. et al. Mean platelet volume is an independent risk factor for myocardial infarction but not for coronary artery disease. Br J Haematol. 2002; 117(2): 399–404. doi: 10.1046/j.1365-2141.2002.03441.x.
  65. Martin J.F., Bath P.M., Burr M.L. Influence of platelet size on outcome after myocardial infarction. Lancet. 1991; 338(8780): 1409–11. doi: 10.1016/0140-6736(91)92719-i.
  66. Bath P., Algert C., Chapman N., Neal B.; PROGRESS Collaborative Group. Association of mean platelet volume with risk of stroke among 3134 individuals with history of cerebrovascular disease. Stroke. 2004; 35(3): 622–26. doi: 10.1161/01.STR.0000116105.26237.EC.
  67. Coban E., Adanir H. Platelet activation in patients with Familial Mediterranean Fever. Platelets. 2008; 19(6): 405–08. doi: 10.1080/09537100802187121.
  68. Bhatia G.S., Sosin M.D., Patel J.V. et al. Plasma indices of endothelial and platelet activation in Rheumatoid Disease: relationship to cardiovascular co-morbidity. Int J Cardiol. 2009; 134(1): 97–103. doi: 10.1016/j.ijcard.2008.01.038.
  69. Fink P.C., Piening U., Fricke P.M., Deicher H. Platelet aggregation and aggregation inhibition by different antiglobulins and antiglobulin complexes from sera of patients with rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum. 1979; 22(8): 896–903. doi: 10.1002/art.1780220814.
  70. Saeed S.A., Gilani A.H., Rasheed H. et al. Plasma from rheumatoid patients taking low dose methotrexate enhances platelet aggregation. Res Commun Mol Pathol Pharmacol. 2002; 111(1–4): 69–76.
  71. Knijff-Dutmer E.A., Kalsbeek-Batenburg E.M., Koerts J., van de Laar M.A. Platelet function is inhibited by non-selective non-steroidal anti-inflammatory drugs but not by cyclo-oxygenase-2-selective inhibitors in patients with rheumatoid arthritis. Rheumatology (Oxford). 2002; 41(4): 458–61. doi: 10.1093/rheumatology/41.4.458.
  72. Alcalay M., Bontoux D., Peltier A. et al. C7 deficiency, abnormal platelet aggregation, and rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum. 1981; 24(1): 102–03. doi: 10.1002/art.1780240118.
  73. Falus A., Meretey K., Bagdy D. et al. Beta-2-microglobulin-specific autoantibodies cause platelet aggregation and interfere with ADP-induced aggregation. Clin Exp Immunol. 1982; 47(1): 103–09.
  74. Riddle J.M., Bluhm G.B., Pitchford W.C. et al. A comparative study of platelet reactivity in arthritis. Ann N Y Acad Sci. 1981; 370: 22–29. doi: 10.1111/j.1749-6632.1981.tb29717.x.
  75. Colli S., Maderna P., Tremoli E. et al. Platelet function in rheumatoid arthritis. Scand J Rheumatol. 1982; 11(3): 139–43. doi: 10.3109/03009748209098179.
  76. Al-Ghamdi A., Attar S.M. Extra-articular manifestations of rheumatoid arthritis: a hospital-based study. Ann Saudi Med. 2009; 29(3): 189–93. doi: 10.4103/0256-4947.51774.
  77. Ertenli I., Haznedaroglu I.C., Kiraz S. et al. Cytokines affecting megakaryocytopoiesis in rheumatoid arthritis with thrombocytosis. Rheumatol Int. 1996; 16(1): 5–8. doi: 10.1007/BF01419947.
  78. Ertenli I., Kiraz S., Oztürk M.A. et al. Pathologic thrombopoiesis of rheumatoid arthritis. Rheumatol Int. 2003; 23(2): 49–60. doi: 10.1007/s00296-003-0289-0.
  79. Kiraz S., Ertenli I., Ozturk M.A. et al. Bloodstream thrombopoietin in rheumatoid arthritis with thrombocytosis. Clin Rheumatol. 2002; 21(6): 453–56. doi: 10.1007/s100670200114.
  80. Hutchinson R.M., Davis P., Jayson M.I. Thrombocytosis in rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 1976; 35(2): 138–42. doi: 10.1136/ard.35.2.138.
  81. Ertenli I., Kiraz S., Arici M. et al. P-selectin as a circulating molecular marker in rheumatoid arthritis with thrombocytosis. J Rheumatol. 1998; 25(6): 1054–58.
  82. Farr M., Scott D.L., Constable T.J. et al. Thrombocytosis of active rheumatoid disease. Ann Rheum Dis. 1983; 42(5): 545–49. doi: 10.1136/ard.42.5.545.
  83. Ehrenfeld M., Penchas S., Eliakim M. Thrombocytosis in rheumatoid arthritis. Recurrent arterial thromboembolism and death. Ann Rheum Dis. 1977; 36(6): 579–81. doi: 10.1136/ard.36.6.579.
  84. Pines A., Kaplinsky N., Olchovsky D. et al. Recurrent transient ischemic attacks associated with thrombocytosis in rheumatoid arthritis. Clin Rheumatol. 1982; 1(4): 291–93. doi: 10.1007/BF02032089.
  85. Casado Naranjo I., Martin Gonzalez R., Sancho Rieger J. et al. Transient ischaemic attacks associated with thrombocytosis in active rheumatoid arthritis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 1988; 51(12): 1599. doi: 10.1136/jnnp.51.12.1599.
  86. Milovanovic M., Nilsson E., Jaremo P. Relationships between platelets and inflammatory markers in rheumatoid arthritis. Clin Chim Acta. 2004; 343(1–2): 237–40. doi: 10.1016/j.cccn.2003.12.030.
  87. Kacena M.A., Horowitz M.C. The role of megakaryocytes in skeletal homeostasis and rheumatoid arthritis. Curr Opin Rheumatol. 2006; 18(4): 405–10. doi: 10.1097/01.bor.0000231910.42666.31.
  88. Talukdar M., Barui G., Adhikari A. et al. A Study on association between common haematological parameters and disease activity in rheumatoid arthritis. J Clin Diagn Res. 2017; 11(1): EC01–EC04. doi: 10.7860/JCDR/2017/23524.9130.
  89. Yazici S., Yazici M., Erer B. et al. The platelet indices in patients with rheumatoid arthritis: mean platelet volume reflects disease activity. Platelets. 2010; 21(2): 122–25. doi: 10.3109/09537100903474373.
  90. Moghimi J., Ghahremanfard F., Salari M., Ghorbani R. Association between mean platelet volume and severity of rheumatoid arthritis. Pan Afr Med J. 2017; 27: 276. doi: 10.11604/pamj.2017.27.276.12228.
  91. Kisacik B., Tufan A., Kalyoncu U. et al. Mean platelet volume (MPV) as an inflammatory marker in ankylosing spondylitis and rheumatoid arthritis. Joint Bone Spine. 2008; 75(3): 291–94. doi: 10.1016/j.jbspin.2007.06.016.
  92. Gasparyan A.Y., Sandoo A., Stavropoulos-Kalinoglou A., Kitas G.D. Mean platelet volume in patients with rheumatoid arthritis: The effect of anti-TNF-α therapy. Rheumatol Int. 2010; 30(8): 1125–29. doi: 10.1007/s00296-009-1345-1.
  93. Khaled S.A.A., NasrEldin E., Makarem Y.S., Mahmoud H.F.F. Value of platelet distribution width and mean platelet volume in Disease Activity Score of rheumatoid arthritis. J Inflamm Res. 2020; 13: 595–606. doi: 10.2147/JIR.S265811.

Об авторах / Для корреспонденции

Вадим Иванович Мазуров, д.м.н., профессор, академик РАН, заслуженный деятель науки РФ, главный научный консультант, директор НИИ ревматологии ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, зав. кафедрой терапии, ревматологии, экспертизы временной нетрудоспособности и качества медицинской помощи им. Э.Э. Эйхвальда ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, руководитель центра аутоиммунных заболеваний СПб ГБУЗ «Клиническая ревматологическая больница № 25». Адрес: 191015, Г. Санкт-Петербург,
ул. Кирочная, д. 41. E-mail: maz.nwgmu@yandex.ru. ORCID: 0000-0002-0797-2051. SPIN-код: 6823-5482
Евгений Сергеевич Мельников, аспирант кафедры терапии, ревматологии, экспертизы временной нетрудоспособности и качества медицинской помощи им. Э.Э. Эйхвальда ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, врач-ревматолог СПб ГБУЗ «Клиническая ревматологическая больница № 25». Адрес: 190068, г. Санкт-Петербург, ул. Большая Подьяческая, д. 30. E-mail: melnikovzhenya@mail.ru. ORCID: 0000-0002-8521-6542
Роман Андреевич Башкинов, аспирант кафедры терапии, ревматологии, экспертизы временной нетрудоспособности и качества медицинской помощи им. Э.Э. Эйхвальда ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, врач-ревматолог СПб ГБУЗ «Клиническая ревматологическая больница № 25». Адрес: 190068, г. Санкт-Петербург, ул. Большая Подьяческая, д. 30. E-mail: bashkinov-roman@mail.ru; ORCID: 0000-0001-9344-1304. SPIN-код: 5169-5066

Также по теме

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.